马绒毛膜促性腺激素的分离纯化研究
| 致谢 | 第5-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| Abstract | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第14-32页 |
| 1.1 孕马血清促性腺激素 | 第14-15页 |
| 1.1.1 eCG的组成 | 第14页 |
| 1.1.2 eCG的性质 | 第14-15页 |
| 1.1.3 eCG的生物学活性与功能 | 第15页 |
| 1.2 eCG的分离纯化 | 第15-22页 |
| 1.2.1 粗分离 | 第16-18页 |
| 1.2.2 纯化与精制 | 第18-22页 |
| 1.3 eCG活性 | 第22-24页 |
| 1.4 唾液酸及其检测 | 第24-31页 |
| 1.4.1 唾液酸的性质 | 第25-26页 |
| 1.4.2 唾液酸的功能 | 第26页 |
| 1.4.3 唾液酸的检测意义 | 第26-27页 |
| 1.4.4 唾液酸的检测方法 | 第27-31页 |
| 1.5 研究目的和意义 | 第31-32页 |
| 第二章 eCG的粗分离及离子交换层析纯化 | 第32-52页 |
| 2.1 引言 | 第32页 |
| 2.2 材料和方法 | 第32-34页 |
| 2.2.1 主要实验试剂 | 第32-33页 |
| 2.2.2 主要仪器和设备 | 第33-34页 |
| 2.3 实验方法 | 第34-41页 |
| 2.3.1 蛋白质纯度的测定 | 第34-36页 |
| 2.3.2 蛋白质浓度的测定 | 第36页 |
| 2.3.3 蛋白质活性的测定 | 第36-37页 |
| 2.3.4 粗分离 | 第37-38页 |
| 2.3.5 洗率及脱盐处理 | 第38页 |
| 2.3.6 离子交换层析 | 第38-41页 |
| 2.4 实验结果和讨论 | 第41-50页 |
| 2.4.1 粗分离条件的选择 | 第41-45页 |
| 2.4.2 洗率及脱盐处理结果与讨论 | 第45-46页 |
| 2.4.3 离子交换层析 | 第46-50页 |
| 2.5 本章小结 | 第50-52页 |
| 第三章 eCG的疏水作用层析纯化 | 第52-63页 |
| 3.1 引言 | 第52页 |
| 3.2 材料和方法 | 第52-53页 |
| 3.2.1 主要实验试剂 | 第52页 |
| 3.2.2 主要仪器和设备 | 第52-53页 |
| 3.3 实验方法 | 第53-57页 |
| 3.3.1 疏水作用层析介质选择 | 第53-54页 |
| 3.3.2 疏水作用层析洗脱条件选择 | 第54-55页 |
| 3.3.3 疏水作用层析上样缓冲液的选择 | 第55-56页 |
| 3.3.4 疏水作用层析纯化eCG验证实验 | 第56-57页 |
| 3.4 实验结果和讨论 | 第57-62页 |
| 3.4.1 疏水作用层析介质确定 | 第57-58页 |
| 3.4.2 疏水作用层析洗脱条件确定 | 第58-59页 |
| 3.4.3 疏水作用层析上样缓冲液的确定 | 第59-60页 |
| 3.4.4 疏水作用层析纯化eCG工艺 | 第60-62页 |
| 3.5 本章小结 | 第62-63页 |
| 第四章 eCG活性与Neu5Ac含量的关系探究 | 第63-76页 |
| 4.1 引言 | 第63页 |
| 4.2 材料和方法 | 第63-65页 |
| 4.2.1 主要实验试剂 | 第63-64页 |
| 4.2.2 主要仪器和设备 | 第64-65页 |
| 4.3 实验方法 | 第65-66页 |
| 4.3.1 Neu5Ac的HPLC检测 | 第65-66页 |
| 4.3.2 样品水解 | 第66页 |
| 4.4 实验结果和讨论 | 第66-73页 |
| 4.4.1 Neu5Ac衍生化反应条件的确定 | 第66-71页 |
| 4.4.2 TFA水解eCG条件的确定 | 第71-73页 |
| 4.5 eCG中Neu5Ac含量的确定 | 第73-75页 |
| 4.6 本章小结 | 第75-76页 |
| 第五章 结论和展望 | 第76-78页 |
| 5.1 结论 | 第76-77页 |
| 5.2 展望 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-85页 |
| 作者简介 | 第85页 |
