| 摘要 | 第4-6页 |
| ABSTRACT | 第6-7页 |
| 1 引言 | 第10-12页 |
| 2 材料与方法 | 第12-29页 |
| 2.1 菌株与血清 | 第12页 |
| 2.2 主要仪器 | 第12-13页 |
| 2.3 试剂 | 第13页 |
| 2.3.1 试剂盒 | 第13页 |
| 2.3.2 其它试剂 | 第13页 |
| 2.4 主要溶液配制 | 第13-18页 |
| 2.5 实验方法 | 第18-29页 |
| 2.5.1 结核分枝杆菌mpt64基因的扩增 | 第18-19页 |
| 2.5.2 克隆质粒pMD18-T-mpt64的构建 | 第19-20页 |
| 2.5.3 重组克隆质粒与表达质粒的大量提取 | 第20-22页 |
| 2.5.4 重组表达质粒pET-28a（+）-mpt64的构建 | 第22页 |
| 2.5.5 重组蛋白MPT64的诱导表达 | 第22-23页 |
| 2.5.6 重组蛋白MPT64的纯化 | 第23-24页 |
| 2.5.7 重组蛋白MPT64的抗原性 | 第24页 |
| 2.5.8 Braford法测定重组MPT64浓度 | 第24-25页 |
| 2.5.9 棋盘滴定法筛选最佳MPT64包被浓度与血清稀释度 | 第25页 |
| 2.5.10 MPT64的ELISA诊断结核病 | 第25-26页 |
| 2.5.11 金纳米棒种子的制备 | 第26页 |
| 2.5.12 金纳米棒的制备 | 第26-27页 |
| 2.5.13 金纳米棒的化学修饰 | 第27页 |
| 2.5.14 金纳米棒与MPT64的连接 | 第27-28页 |
| 2.5.15 金纳米棒生物传感器的血清学检测 | 第28页 |
| 2.5.16 仪器参数 | 第28-29页 |
| 3 结果 | 第29-39页 |
| 3.1 结核分枝杆菌mpt64的扩增与克隆 | 第29-30页 |
| 3.2 重组表达质粒pET-28a（+）-mpt64的构建 | 第30-31页 |
| 3.3 重组蛋白MPT64的诱导表达 | 第31页 |
| 3.4 重组蛋白MPT64的纯化 | 第31-32页 |
| 3.5 重组蛋白MPT64的抗原性 | 第32-33页 |
| 3.6 Braford法测定重组蛋白MPT64浓度 | 第33页 |
| 3.7 棋盘滴定法确定最佳重组MPT64包被浓度与血清稀释度 | 第33页 |
| 3.8 重组MPT64抗原ELISA诊断结核病 | 第33-34页 |
| 3.9 金纳米棒的制备 | 第34-35页 |
| 3.10 金纳米棒的MPT64抗原连接 | 第35-36页 |
| 3.11 金纳米棒生物传感器的血清学检测 | 第36-38页 |
| 3.12 重组蛋白MPT64的ELISA和金纳米棒生物传感器诊断结核病的比较 | 第38-39页 |
| 4 讨论 | 第39-45页 |
| 结论 | 第45-46页 |
| 参考文献 | 第46-51页 |
| 文献综述 | 第51-60页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第60-61页 |
| 在校期间发表的主要学术论文 | 第61-62页 |
| 致谢 | 第62页 |
