| 摘要 | 第6-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 中英文缩略表（Abbreviation） | 第10-11页 |
| 1.前言 | 第11-18页 |
| 1.1 趋化因子CXCL10和其受体CXCR3的研究进展 | 第11-14页 |
| 1.1.1 趋化因子CXCL10的特性 | 第11-12页 |
| 1.1.3 趋化因子受体CXCR3的特性 | 第12页 |
| 1.1.4 CXCL10/CXCR3介导Th1型炎症反应 | 第12-13页 |
| 1.1.5 CXCL10/CXCR3在肺损伤中的作用 | 第13-14页 |
| 1.2 PRRS的国内外研究现状 | 第14-16页 |
| 1.2.1 PRRS简介 | 第14-15页 |
| 1.2.2 PRRSV的特性 | 第15-16页 |
| 1.2.3 PRRS的防治 | 第16页 |
| 1.3 CXCL10/CXCR3在感染PRRSV猪肺损伤中的作用 | 第16-17页 |
| 1.4 研究目的 | 第17-18页 |
| 2.试验材料和方法 | 第18-35页 |
| 2.1 试验材料 | 第18-24页 |
| 2.1.1 动物材料 | 第18页 |
| 2.1.2 细胞系 | 第18-19页 |
| 2.1.3 主要仪器和试剂 | 第19页 |
| 2.1.4 主要试剂 | 第19-20页 |
| 2.1.5 主要溶液的配制 | 第20-23页 |
| 2.1.6 引物序列 | 第23-24页 |
| 2.2 试验方法 | 第24-34页 |
| 2.2.1 采样 | 第24页 |
| 2.2.2 攻毒实验 | 第24-26页 |
| 2.2.3 总RNA提取方法 | 第26-27页 |
| 2.2.4 电泳检测RNA | 第27-28页 |
| 2.2.5 RNA的逆转录 | 第28页 |
| 2.2.6 总蛋白提取方法 | 第28-29页 |
| 2.2.7 总蛋白浓度的测定方法 | 第29页 |
| 2.2.8 聚合酶链式反应（PCR） | 第29-30页 |
| 2.2.9 实时荧光定量PCR（Real time-qPCR） | 第30-31页 |
| 2.2.10 PCR产物的电泳检测 | 第31页 |
| 2.2.11 免疫印迹试验（Western blot） | 第31-33页 |
| 2.2.12 免疫印迹膜再生 | 第33页 |
| 2.2.13 MTT药物实验 | 第33-34页 |
| 2.3 统计学方法 | 第34-35页 |
| 3.结果与分析 | 第35-47页 |
| 3.1 猪肺组织和巨噬细胞总RNA提取结果 | 第35页 |
| 3.2 趋化因子CXCL10和受体CXCR3在组织中表达 | 第35-39页 |
| 3.2.1 趋化因子CXCL10在猪肺组织中mRNA的表达水平变化 | 第35-36页 |
| 3.2.2 CXCL10受体CXCR3在猪肺组织中mRNA的表达水平变化 | 第36-38页 |
| 3.2.3 CXCL10受体CXCR3在猪肺组织中蛋白的表达水平变化 | 第38-39页 |
| 3.3 趋化因子CXCL10 mRNA在细胞中表达水平变化 | 第39-42页 |
| 3.4 趋化因子受体CXCR3在细胞中表达水平变化 | 第42-45页 |
| 3.4.1 趋化因子受体CXCR3 mRNA在细胞中表达水平变化 | 第42-43页 |
| 3.4.2 趋化因子受体CXCR3蛋白在细胞中表达水平变化 | 第43-45页 |
| 3.5 活细胞分析方法（MTT法）检测细胞的活性 | 第45-47页 |
| 4.讨论 | 第47-50页 |
| 4.1 PRRSV影响CXCL10、CXCR3在猪肺组织中表达 | 第47-48页 |
| 4.2 不同刺激物影响CXCL10、CXCR3在巨噬细胞中的表达 | 第48-50页 |
| 5.结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
