| 摘要 | 第3-5页 |
| Abstract | 第5-6页 |
| 第一章 绪论 | 第9-19页 |
| 1.1 引言 | 第9页 |
| 1.2 姜黄素的概述 | 第9-11页 |
| 1.3 超声-双水相提取技术 | 第11-13页 |
| 1.4 蛋白质与天然植物活性成分相互作用 | 第13-15页 |
| 1.4.1 牛血清蛋白 | 第13-14页 |
| 1.4.2 血清白蛋白与天然药物的相互作用 | 第14-15页 |
| 1.5 检测手段 | 第15-19页 |
| 1.5.1 紫外-可见光分光光度法 | 第15-16页 |
| 1.5.2 高效液相法 | 第16-17页 |
| 1.5.3 荧光光谱法 | 第17-18页 |
| 1.5.4 原子力显微镜 | 第18-19页 |
| 第二章 超声-双水相提取姜黄素工艺研究 | 第19-33页 |
| 2.1 前言 | 第19页 |
| 2.2 实验仪器和试剂 | 第19-20页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第19页 |
| 2.2.2 试剂 | 第19-20页 |
| 2.3 实验步骤和结果 | 第20-32页 |
| 2.3.1 检测方法 | 第20-21页 |
| 2.3.1.1 波长的选择 | 第20页 |
| 2.3.1.2 姜黄素HPLC检测 | 第20-21页 |
| 2.3.2 双水相提取过程 | 第21-22页 |
| 2.3.2.1 ATPS的制备 | 第21-22页 |
| 2.3.2.2 超声协同提取与初步纯化 | 第22页 |
| 2.3.3 姜黄素在ATPS中的分配 | 第22-24页 |
| 2.3.4 姜黄素提取条件的选择 | 第24-28页 |
| 2.3.4.1 料液比单因素实验 | 第25页 |
| 2.3.4.2 超声密度单因素实验 | 第25-26页 |
| 2.3.4.3 超声时间单因素实验 | 第26-27页 |
| 2.3.4.4 提取温度单因素实验 | 第27-28页 |
| 2.3.5 响应面法优化提取条件 | 第28-32页 |
| 2.3.5.1 响应面实验 | 第28-32页 |
| 2.3.5.2 预测结果验证 | 第32页 |
| 2.4 小结 | 第32-33页 |
| 第三章 超声-双水相提取技术的优劣性探讨及高纯姜黄素的制备 | 第33-41页 |
| 3.1 前言 | 第33页 |
| 3.2 仪器和试剂 | 第33-34页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第33页 |
| 3.2.2 试剂 | 第33-34页 |
| 3.3 实验步骤与结果 | 第34-40页 |
| 3.3.1 UA-ATPE放大实验 | 第34-35页 |
| 3.3.2 与传统提取工艺的比较 | 第35-36页 |
| 3.3.3 半制备液相实验 | 第36-40页 |
| 3.4 小结 | 第40-41页 |
| 第四章 姜黄素与牛血清蛋白相互作用研究 | 第41-55页 |
| 4.1 前言 | 第41页 |
| 4.2 仪器和试剂 | 第41-42页 |
| 4.2.1 实验仪器 | 第41-42页 |
| 4.2.2 试剂 | 第42页 |
| 4.3 实验步骤与结果 | 第42-53页 |
| 4.3.1 内滤效应 | 第42页 |
| 4.3.2 荧光淬灭实验 | 第42-49页 |
| 4.3.2.1 实验操作 | 第43页 |
| 4.3.2.2 淬灭机制的判断 | 第43-46页 |
| 4.3.2.3 结合参数的计算 | 第46-47页 |
| 4.3.2.4 热力学分析 | 第47-49页 |
| 4.3.3 同步荧光实验 | 第49-50页 |
| 4.3.4 紫外-可见光光谱实验 | 第50-51页 |
| 4.3.5 AFM检测 | 第51-53页 |
| 4.4 小结 | 第53-55页 |
| 第五章 总结与展望 | 第55-57页 |
| 参考文献 | 第57-63页 |
| 致谢 | 第63-65页 |
| 攻读硕士学位期间研究成果 | 第65页 |