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TREM2调节的小胶质细胞增殖与活化对AD病理的影响及作用机制

中文摘要第5-8页
Abstract第8-10页
第一章 序言第11-16页
    1.1 研究背景第11-13页
    1.2 研究目的、意义第13-14页
    1.3 研究内容第14-15页
    1.4 技术路线第15-16页
第二章 材料与方法第16-29页
    2.1 实验材料第16-19页
        2.1.1 主要仪器设备第16-17页
        2.1.2 主要试剂第17-19页
        2.1.3 实验动物第19页
    2.2 实验方法第19-28页
        2.2.1 常用试剂配制第19-21页
        2.2.2 构建昆明小鼠AD模型第21-22页
        2.2.3 动物取材第22页
        2.2.4 组织石蜡包埋与组织切片制备第22-23页
        2.2.5 苏木素‐伊红染色(HE染色)第23-24页
        2.2.6 免疫组织化学检测(HRP-DAB法)第24-25页
        2.2.7 免疫组织化学检测(硫酸镍铵法)第25页
        2.2.8 免疫组织荧光检测第25-26页
        2.2.9 蛋白印迹检测第26-28页
    2.3 数据统计第28-29页
第三章 结果第29-49页
    3.1 PDTC处理后各组小鼠海马内TREM2表达增加第29-31页
    3.2 各组小鼠海马TREM2 Western blot半定量分析结果第31-32页
    3.3 各组小鼠脑内小胶质细胞(CD11B)的表达第32-36页
    3.4 各组小鼠海马CD11B表达Western blot半定量分析结果第36-37页
    3.5 小胶质细胞与TREM2共表达第37-38页
    3.6 TREM2表达增加对小胶质细胞形态的影响第38-39页
    3.7 小胶质细胞与Aβ 共表达第39-40页
    3.8 小胶质细胞活化对小鼠海马内外源性Aβ 代谢的影响第40-42页
    3.9 各组小鼠海马内BDNF的表达第42-44页
    3.10 各组小鼠海马齿状回颗粒层神经元(DCX)再生第44-46页
    3.11 各组小鼠海马BDNF和DCX Western blot半定量分析结果第46-47页
    3.12 PDTC处理后各组海马区损伤修复程度第47-49页
第四章 讨论第49-58页
结论第58-59页
参考文献第59-68页
中英文缩写对照表第68-69页
攻读硕士学位期间发表论文第69-70页
致谢第70-71页

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