| 中文摘要 | 第7-10页 |
| Abstract | 第10-13页 |
| 中英文缩写语对照表 | 第14-16页 |
| 第一章 序言 | 第16-22页 |
| 1.1 研究背景 | 第16-19页 |
| 1.1.1 ACR的一般特性 | 第16-17页 |
| 1.1.2 ACR的神经毒性研究 | 第17页 |
| 1.1.3 ACR对神经胶质细胞影响的研究现状 | 第17-19页 |
| 1.2 研究目的、意义 | 第19-20页 |
| 1.3 研究内容 | 第20-21页 |
| 1.3.1 ACR母源性暴露大鼠模型的制备 | 第20页 |
| 1.3.2 ACR对孕哺期母鼠大脑髓鞘的毒性作用 | 第20页 |
| 1.3.3 ACR母源性暴露对仔鼠大脑髓鞘化的影响 | 第20页 |
| 1.3.4 ACR母源性暴露对仔鼠大脑神经元和突触发育的影响 | 第20-21页 |
| 1.4 技术路线 | 第21-22页 |
| 第二章 丙烯酰胺染毒对孕哺期母鼠胼胝体髓鞘的毒性作用 | 第22-49页 |
| 2.1 前言 | 第22-23页 |
| 2.2 实验材料 | 第23-26页 |
| 2.2.1 主要仪器设备 | 第23-24页 |
| 2.2.2 主要试剂 | 第24-26页 |
| 2.2.3 实验动物 | 第26页 |
| 2.3 实验方法 | 第26-36页 |
| 2.3.1 常用试剂的配制 | 第26-28页 |
| 2.3.2 动物造模 | 第28-30页 |
| 2.3.3 对母鼠体重和步态的观测 | 第30-31页 |
| 2.3.4 动物取材 | 第31页 |
| 2.3.5 脑组织切片的制作 | 第31-32页 |
| 2.3.6 Nissl染色（甲苯胺蓝染色） | 第32页 |
| 2.3.7 苏木素-伊红染色（HE染色） | 第32页 |
| 2.3.8 劳克坚牢蓝染色（Luxol Fast Blue，LFB，焦油紫法） | 第32-33页 |
| 2.3.9 免疫组织化学方法检测 | 第33-34页 |
| 2.3.10 脑组织蛋白质的提取和定量 | 第34页 |
| 2.3.11 Western免疫印迹法检测 | 第34-35页 |
| 2.3.12 统计学分析 | 第35-36页 |
| 2.4 结果 | 第36-46页 |
| 2.4.1 ACR染毒对母鼠产后体重的影响 | 第36页 |
| 2.4.2 ACR染毒对母鼠步态的影响 | 第36-38页 |
| 2.4.3 Nissl染色检测皮质尼氏小体 | 第38页 |
| 2.4.4 免疫组织化学方法检测母鼠胼胝体GFAP的表达情况 | 第38-40页 |
| 2.4.5 HE染色检测母鼠胼胝体膝 | 第40页 |
| 2.4.6 劳克坚牢蓝染色（LFB）检测母鼠大脑髓鞘 | 第40-41页 |
| 2.4.7 免疫组织化学方法检测母鼠胼胝体PLP的表达情况 | 第41-42页 |
| 2.4.8 免疫组织化学方法检测母鼠胼胝体MBP的表达情况 | 第42-44页 |
| 2.4.9 Western免疫印迹法检测母鼠大脑GFAP、PLP和MBP的表达 | 第44-46页 |
| 2.5 讨论 | 第46-48页 |
| 2.6 小结 | 第48-49页 |
| 第三章 丙烯酰胺母源性暴露对仔鼠大脑髓鞘化的影响 | 第49-75页 |
| 3.1 前言 | 第49页 |
| 3.2 实验方法 | 第49-51页 |
| 3.2.1 动物造模 | 第49页 |
| 3.2.2 仔鼠的生长情况观测 | 第49-50页 |
| 3.2.3 动物取材 | 第50页 |
| 3.2.4 脑组织切片的制作 | 第50页 |
| 3.2.5 脑组织蛋白质的提取和定量 | 第50页 |
| 3.2.6 透射电镜检测 | 第50页 |
| 3.2.7 劳克坚牢蓝染色（Luxol Fast Blue，LFB，焦油紫法） | 第50页 |
| 3.2.8 免疫组织化学检测 | 第50页 |
| 3.2.9 免疫荧光双标记定位 | 第50-51页 |
| 3.2.10 Western免疫印迹法检测 | 第51页 |
| 3.2.11 统计学处理 | 第51页 |
| 3.3 结果 | 第51-71页 |
| 3.3.1 ACR母源性暴露对仔鼠存活率和体重的影响 | 第51-54页 |
| 3.3.2 透射电镜检测P14仔鼠皮质下白质髓鞘的形态结构 | 第54页 |
| 3.3.3 劳克坚牢蓝染色检测仔鼠大脑髓鞘 | 第54-57页 |
| 3.3.4 不同鼠龄正常仔鼠MBP的表达 | 第57-58页 |
| 3.3.5 ACR母源性暴露对仔鼠PLP表达的影响 | 第58-62页 |
| 3.3.6 ACR母源性暴露对仔鼠MBP表达的影响 | 第62-67页 |
| 3.3.7 MBP和PLP免疫荧光双标记定位 | 第67-69页 |
| 3.3.8 Western免疫印迹法检测仔鼠PLP和MBP的表达 | 第69-71页 |
| 3.4 讨论 | 第71-74页 |
| 3.5 小结 | 第74-75页 |
| 第四章 丙烯酰胺母源性暴露对仔鼠神经元和突触发育的影响 | 第75-87页 |
| 4.1 前言 | 第75-76页 |
| 4.2 实验方法 | 第76-77页 |
| 4.2.1 动物造模 | 第76页 |
| 4.2.2 动物取材 | 第76页 |
| 4.2.3 脑组织切片的制作 | 第76页 |
| 4.2.4 脑组织蛋白质的提取和定量 | 第76页 |
| 4.2.5 透射电镜检测 | 第76页 |
| 4.2.6 免疫组织化学检测 | 第76页 |
| 4.2.7 Western免疫印迹法检测 | 第76页 |
| 4.2.8 统计学处理 | 第76-77页 |
| 4.3 结果 | 第77-83页 |
| 4.3.1 透射电镜检测P14仔鼠额叶皮质的突触结构 | 第77页 |
| 4.3.2 ACR对P14仔鼠海马齿状回GAP-43 表达的影响 | 第77-78页 |
| 4.3.3 ACR对P14仔鼠海马齿状回DCX表达的影响 | 第78-79页 |
| 4.3.4 ACR对P14仔鼠海马齿状回GFAP表达的影响 | 第79-80页 |
| 4.3.5 Western免疫印迹法检测仔鼠DCX、SYP和GFAP的表达 | 第80-83页 |
| 4.4 讨论 | 第83-85页 |
| 4.5 小结 | 第85-87页 |
| 全文总结 | 第87-89页 |
| 参考文献 | 第89-99页 |
| 攻读学位期间发表的文章 | 第99-101页 |
| 致谢 | 第101页 |
