摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
1 前言 | 第10-22页 |
1.1 拟南芥(Arabidopsis thaliana)简介 | 第10页 |
1.2 灰葡萄孢菌(Botrytis cinerea)研究概况 | 第10-11页 |
1.2.1 灰葡萄孢菌致病症状 | 第10-11页 |
1.2.2 灰葡萄孢菌致病条件 | 第11页 |
1.3 植物信号转导途径研究概况 | 第11-14页 |
1.3.1 水杨酸及其信号转导途径的研究 | 第12页 |
1.3.2 茉莉酸及其信号转导途径的研究 | 第12页 |
1.3.3 乙烯及其信号转导途径的研究 | 第12-13页 |
1.3.4 NO及其信号转导途径的研究 | 第13-14页 |
1.3.5 脱落酸信号转导途径的研究 | 第14页 |
1.4 植物激素信号转导途径突变体概况 | 第14-16页 |
1.4.1 npr1突变体概况 | 第14页 |
1.4.2 noa1突变体概况 | 第14-15页 |
1.4.3 jar1突变体概况 | 第15页 |
1.4.4 coi1突变体概况 | 第15-16页 |
1.4.5 abi4突变体概况 | 第16页 |
1.5 ESB1基因概况 | 第16-19页 |
1.5.1 ESB1基因的发现和定位 | 第16-17页 |
1.5.2 esb1突变体及其遗传互补株系对非生物胁迫及灰葡萄孢菌的反应 | 第17页 |
1.5.3 ESB1基因在植物各组织的表达情况 | 第17-18页 |
1.5.4 ESB1基因超表达株概况 | 第18-19页 |
1.5.5 ESB1编码一个线粒体蛋白 | 第19页 |
1.5.6 Mic60蛋白复合体参与到线粒体磷脂转运过程中 | 第19页 |
1.6 拟南芥突变体诱导及其检测 | 第19-20页 |
1.6.1 拟南芥突变体诱导种类 | 第19-20页 |
1.6.2 拟南芥突变体的鉴定方法 | 第20页 |
1.7 本研究意义 | 第20-22页 |
2 拟南芥相关突变体的突变位点和纯合性检测 | 第22-37页 |
2.1 材料与方法 | 第22-28页 |
2.1.1 植物材料 | 第22页 |
2.1.2 实验方法 | 第22-28页 |
2.2 实验结果 | 第28-37页 |
2.2.1 RNA纯度检测 | 第29页 |
2.2.2 突变位点及其纯杂合性的分子鉴定 | 第29-35页 |
2.2.3 突变体对激素的敏感性检测 | 第35-37页 |
3 拟南芥mic60突变体线粒体形态的电镜观察 | 第37-40页 |
3.1 材料与方法 | 第37-38页 |
3.1.1 植物材料 | 第37页 |
3.1.2 仪器 | 第37页 |
3.1.3 实验方法 | 第37-38页 |
3.2 结果与分析 | 第38-40页 |
4 Mic60超表达株和mic60.2 遗传互补植株对灰葡萄孢菌侵染的反应 | 第40-44页 |
4.1 材料与方法 | 第40-41页 |
4.1.1 实验材料 | 第40页 |
4.1.2 实验方法 | 第40-41页 |
4.2 结果与分析 | 第41-44页 |
5 Mic60基因与三种激素信号转导的相关性初探 | 第44-49页 |
5.1 材料与方法 | 第44页 |
5.1.1 植物与病菌材料 | 第44页 |
5.1.2 实验方法 | 第44页 |
5.2 结果与分析 | 第44-49页 |
5.2.1 mic60.2 中三种激素信号途径重要节点基因的表达水平 | 第44-45页 |
5.2.2 SA、JA、NO和ABA信号途径突变体中Mic60的表达水平分析 | 第45-47页 |
5.2.3 灰葡萄孢菌侵染对mic60.2 中三条激素信号途径重要节点基因表达量的影响 | 第47-49页 |
6 mic60.2 jar1双突变体的构建 | 第49-51页 |
6.1 实验材料与方法 | 第49-50页 |
6.1.1 实验材料 | 第49页 |
6.1.2 拟南芥双突变体的构建 | 第49页 |
6.1.3 双突变体的分子鉴定 | 第49-50页 |
6.2 结果与分析 | 第50-51页 |
6.2.1 jar1与mic60.2 的杂交 | 第50页 |
6.2.2 杂交F1代中两个基因的纯杂性鉴定 | 第50-51页 |
7 讨论 | 第51-55页 |
8 结论 | 第55-56页 |
参考文献 | 第56-61页 |
附录 | 第61-62页 |
致谢 | 第62页 |