中文摘要 | 第3-5页 |
Abstract | 第5-6页 |
缩略语 | 第11-13页 |
前言 | 第13-20页 |
研究现状、成果 | 第13-18页 |
研究目的、方法 | 第18-20页 |
一、钛表面处理与表面自组装涂层的制备及表征观察 | 第20-38页 |
1.1 对象和方法 | 第20-24页 |
1.1.1 主要试剂耗材 | 第20页 |
1.1.2 主要设备 | 第20-21页 |
1.1.3 光滑钛片的制备 | 第21页 |
1.1.4 各种聚电解质溶液的配置 | 第21页 |
1.1.5 纯钛表面PTL改性 | 第21页 |
1.1.6 纳米银合成 | 第21-22页 |
1.1.7 纯钛表面多层聚电解质载纳米银复合涂层的组装 | 第22-24页 |
1.2 钛片表面复合涂层形貌组成及亲水性等表征 | 第24页 |
1.2.1 XPS、SEM和EDX检测 | 第24页 |
1.2.2 纳米银溶液的TEM表征 | 第24页 |
1.2.3 接触角实验 | 第24页 |
1.3 结果 | 第24-31页 |
1.3.1 钛表面SEM和EDX观察 | 第24-26页 |
1.3.2 钛表面XPS分析 | 第26-29页 |
1.3.3 纳米银TEM观察 | 第29页 |
1.3.4 接触角的测量 | 第29-31页 |
1.4 讨论 | 第31-37页 |
1.4.1PTL对表面进行改性 | 第31-34页 |
1.4.2 利用LbL技术构建抗菌复合涂层 | 第34-36页 |
1.4.3 纳米银的制备 | 第36-37页 |
1.5 小结 | 第37-38页 |
二、载银复合涂层组装后钛片的抑菌实验及银的缓释研究 | 第38-59页 |
2.1 对象和方法 | 第39-42页 |
2.1.1 主要试剂耗材 | 第39页 |
2.1.2 主要设备 | 第39页 |
2.1.3 培养基配制 | 第39-40页 |
2.1.4 基材的制备及分组 | 第40页 |
2.1.5 建立金黄色葡萄球菌模型 | 第40页 |
2.1.6 试样的扫描电镜观察 | 第40-41页 |
2.1.7 试样中的银缓释释放测定 | 第41页 |
2.1.8 纳米银最低抑菌浓度测定 | 第41页 |
2.1.9 建立血链球菌模型 | 第41-42页 |
2.2 抗菌实验 | 第42-43页 |
2.2.1 试样对游离细菌、粘附细菌的抑制测定 | 第42-43页 |
2.2.2 试样表面细菌荧光染色 | 第43页 |
2.2.3 统计分析 | 第43页 |
2.3 结果 | 第43-53页 |
2.3.1SEM观察试样表面细菌生长形态 | 第43-46页 |
2.3.2 试样表面不同浓度的银释放 | 第46-47页 |
2.3.3 试样抗菌功能 | 第47-49页 |
2.3.4 MIC结果 | 第49页 |
2.3.5 试样表面荧光染色结果 | 第49-53页 |
2.4 讨论 | 第53-57页 |
2.5 小结 | 第57-59页 |
三、载银复合涂层组装后钛片的生物相容性评价 | 第59-77页 |
3.1 对象及方法 | 第59-64页 |
3.1.1 细胞来源 | 第59页 |
3.1.2 主要试剂耗材 | 第59-60页 |
3.1.3 主要仪器设备 | 第60页 |
3.1.4 主要试剂配制 | 第60页 |
3.1.5 小鼠前成骨细胞MC3T3培养 | 第60-61页 |
3.1.6 LDH活性检测 | 第61-62页 |
3.1.7 细胞活性检测 | 第62页 |
3.1.8 碱性磷酸酶活性检测 | 第62-63页 |
3.1.9 蛋白吸附检测 | 第63页 |
3.1.10 细胞增殖检测 | 第63-64页 |
3.1.11 细胞粘附 | 第64页 |
3.1.12 统计分析 | 第64页 |
3.2 结果 | 第64-72页 |
3.2.1 观察细胞生长情况 | 第64-65页 |
3.2.2 细胞毒性 | 第65-66页 |
3.2.3 细胞活性 | 第66-67页 |
3.2.4 碱性磷酸酶活性 | 第67-68页 |
3.2.5 蛋白吸附 | 第68-69页 |
3.2.6 细胞增殖 | 第69-70页 |
3.2.7 细胞粘附 | 第70-72页 |
3.4 讨论 | 第72-76页 |
3.5 小结 | 第76-77页 |
全文结论 | 第77-79页 |
论文创新点 | 第79-80页 |
参考文献 | 第80-92页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第92-93页 |
综述 纯钛种植体表面改性的研究现状 | 第93-101页 |
综述参考文献 | 第97-101页 |
致谢 | 第101-102页 |
个人简历 | 第102页 |