| 中文摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 缩略语/符号说明 | 第13-14页 |
| 前言 | 第14-18页 |
| 研究现状、成果 | 第14-16页 |
| 研究目的、方法 | 第16-18页 |
| 一、miRNA-451对RF/6A血管内皮细胞生物学特征的影响 | 第18-36页 |
| 1.1 对象和方法 | 第18-24页 |
| 1.1.1 细胞系 | 第18页 |
| 1.1.2 主要试剂 | 第18页 |
| 1.1.3 实验器材 | 第18-19页 |
| 1.1.4 试剂制配与实验准备 | 第19页 |
| 1.1.5 RF/6A细胞复苏与培养 | 第19页 |
| 1.1.6 细胞传代 | 第19-20页 |
| 1.1.7 细胞计数 | 第20页 |
| 1.1.8 转染效率检测 | 第20-21页 |
| 1.1.9 CCK-8 细胞增殖实验 | 第21-22页 |
| 1.1.10 细胞划痕实验 | 第22页 |
| 1.1.11 Transwell迁移实验 | 第22-23页 |
| 1.1.12 Matrigel管腔形成实验 | 第23页 |
| 1.1.13 统计学分析 | 第23-24页 |
| 1.2 结果 | 第24-30页 |
| 1.2.1 F/6A视网膜血管内皮细胞形态学特征 | 第24页 |
| 1.2.2 转染效率检测 | 第24-25页 |
| 1.2.3 CCK-8 细胞增殖结果 | 第25页 |
| 1.2.4 细胞划痕结果 | 第25-28页 |
| 1.2.5 Transwell迁移结果 | 第28页 |
| 1.2.6 Matrigel管腔形成结果 | 第28-30页 |
| 1.3 讨论 | 第30-35页 |
| 1.3.1 转染技术 | 第30-32页 |
| 1.3.2 miRNA-451对细胞增殖能力的影响 | 第32页 |
| 1.3.3 miRNA-451对细胞迁移能力的影响 | 第32-34页 |
| 1.3.4 miRNA-451对细胞管腔形成能力的影响 | 第34-35页 |
| 1.4 小结 | 第35-36页 |
| 二、miRNA-451影响相关基因表达的探究 | 第36-47页 |
| 2.1 对象和方法 | 第36-38页 |
| 2.1.1 主要试剂 | 第36页 |
| 2.1.2 实验器材 | 第36页 |
| 2.1.3 试剂制配与实验准备 | 第36-37页 |
| 2.1.4 Trizol法提取RNA | 第37页 |
| 2.1.5 反转录合成cDNA | 第37-38页 |
| 2.1.6 Real-Time PCR | 第38页 |
| 2.2 结果 | 第38-41页 |
| 2.3 讨论 | 第41-46页 |
| 2.3.1 miRNA-451与Cyclins | 第41-43页 |
| 2.3.2 miRNA-451与PDGFRα | 第43-45页 |
| 2.3.3 miRNA-451与MMP2 | 第45-46页 |
| 2.4 小结 | 第46-47页 |
| 三、miRNA-451靶基因的生物信息学预测 | 第47-53页 |
| 3.1 对象和方法 | 第47页 |
| 3.1.1 对象 | 第47页 |
| 3.1.2 方法 | 第47页 |
| 3.2 结果 | 第47-49页 |
| 3.2.1 数据库或预测软件预测miRNA-451靶点 | 第47-48页 |
| 3.2.2 miRNA-451功能富集分析 | 第48页 |
| 3.2.3 信号转导通路富集分析 | 第48-49页 |
| 3.3 讨论 | 第49-51页 |
| 3.3.1 生物信息学结果分析 | 第49-50页 |
| 3.3.2 双荧光酶报告基因进行下一步检测 | 第50-51页 |
| 3.4 小结 | 第51-53页 |
| 结论 | 第53-54页 |
| 参考文献 | 第54-59页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第59-60页 |
| 综述 miRNA-451的研究进展 | 第60-71页 |
| 综述参考文献 | 第66-71页 |
| 致谢 | 第71-73页 |
| 个人简历 | 第73页 |
