缩略语表 | 第6-7页 |
中文摘要 | 第7-10页 |
英文摘要 | 第10-13页 |
前言 | 第14-15页 |
文献回顾 | 第15-26页 |
实验一 组织特异性ECM在牙周膜干细胞成骨分化中作用的研究 | 第26-39页 |
1. 材料 | 第26-28页 |
1.1 实验试剂 | 第26-27页 |
1.2 实验仪器 | 第27-28页 |
2 方法 | 第28-30页 |
2.1 人骨髓细胞hBMCs的原代培养 | 第28页 |
2.2 人牙周膜细胞hPDLCs的原代培养 | 第28页 |
2.3 制备hBMCs-ECM和hPDLCs-ECM | 第28页 |
2.4 hPDLSCs的分离、培养、鉴定 | 第28-29页 |
2.5 组织特异性ECM对hPDLSCs成骨分化的影响 | 第29-30页 |
2.6 Real-time PCR检测hPDLSCs成骨相关基因 | 第30页 |
2.7 数据分析 | 第30页 |
3 结果 | 第30-35页 |
3.1 ECM镜下形态观察 | 第30-31页 |
3.2 hPDLSCs的分离培养 | 第31-33页 |
3.3 组织特异性ECM对hPDLSCs成骨分化的促进作用 | 第33-35页 |
4 讨论 | 第35-39页 |
实验二 P2X7受体在hPDLSCs成骨分化中作用的研究 | 第39-47页 |
1 材料 | 第39-40页 |
1.1 实验试剂 | 第39-40页 |
1.2 实验仪器 | 第40页 |
2 方法 | 第40-41页 |
2.1 hPDLSCs的分离、培养和鉴定 | 第40页 |
2.2 hPDLSCs的成骨分化实验 | 第40页 |
2.3 Real-time PCR检测 | 第40-41页 |
2.4 Western blot检测 | 第41页 |
2.5 统计学分析 | 第41页 |
3 结果 | 第41-45页 |
3.1 hPDLSCs的鉴定 | 第41-42页 |
3.2 外源性三磷酸腺苷对hPDLSCs成骨分化的影响 | 第42-43页 |
3.3 外源性三磷酸腺苷对hPDLSCs成骨分化相关基因RUNX2、OCN表达的影响 | 第43-44页 |
3.4 P2X7受体的表达与hPDLSCs成骨分化的关系 | 第44-45页 |
4 讨论 | 第45-47页 |
实验三 P2X7受体在ECM促进牙周膜干细胞成骨分化过程中作用的研究 | 第47-58页 |
1 材料 | 第47-48页 |
1.1 实验试剂 | 第47-48页 |
1.2 实验仪器 | 第48页 |
1.3 实验动物 | 第48页 |
2 方法 | 第48-50页 |
2.1 hPDLSCs的分离、培养和鉴定 | 第48页 |
2.2 hBMCs-ECM的制备 | 第48页 |
2.3 细胞免疫荧光检测 | 第48-49页 |
2.4 Western-Blot检测 | 第49页 |
2.5 基质矿化染色 | 第49页 |
2.6 Real-time PCR检测 | 第49页 |
2.7 异位成骨检测 | 第49-50页 |
2.8 数据分析 | 第50页 |
3 结果 | 第50-55页 |
3.1 hPDLSCs的原代培养与hBMCs-ECM的制备 | 第50页 |
3.2 细胞免疫荧光检测P2X7受体表达 | 第50-51页 |
3.3 Western-Blot检测P2X7受体表达 | 第51-52页 |
3.4 Real-time PCR检测P2X7受体表达 | 第52页 |
3.5 hPDLSCs体外成骨分化 | 第52-54页 |
3.6 体内异位成骨 | 第54-55页 |
4 讨论 | 第55-58页 |
小结 | 第58-60页 |
参考文献 | 第60-75页 |
个人简历和研究成果 | 第75-76页 |
致谢 | 第76页 |