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利用RNA干扰技术沉默稻纵卷叶螟几丁质合成酶A基因

摘要第7-9页
Abstract第9-11页
缩略词第12-14页
第一章 文献综述第14-31页
    1 稻纵卷叶螟第14-16页
    2 昆虫几丁质合成酶和几丁质合成酶基因第16-17页
    3 RNAi的研究进展及应用第17-21页
        3.1 RNAi的研究进展第17-20页
        3.2 RNAi在害虫生物防治中的应用第20-21页
    4 植物转基因技术及其应用第21-28页
        4.1 植物转基因技术第21-26页
        4.2 植物转基因技术的应用第26-28页
    5 研究目的及意义第28-30页
        5.1 研究目的第28页
        5.2 研究意义第28-30页
    6 本研究采取的技术路线第30-31页
第二章 稻纵卷叶螟几丁质合成酶A基因的克隆、序列分析及mRNA表达分析第31-69页
    1 实验材料第32-35页
        1.1 供试昆虫及取样第32页
        1.2 主要试剂与耗材第32-33页
            1.2.1 Amp溶液的配制第33页
            1.2.2 X-gal溶液的配制第33页
            1.2.3 IPTG溶液的配制第33页
        1.3 主要仪器第33-34页
        1.4 大肠杆菌培养基(LB)第34-35页
            1.4.1 液体LB培养基第34页
            1.4.2 固体LB培养基第34-35页
    2 实验方法第35-47页
        2.1 稻纵卷叶螟总RNA的抽提第35-36页
        2.2 第一链cDNA合成第36-38页
            2.2.1 用于RT-PCR第一链cDNA合成第36-37页
            2.2.2 用于 3' RACE-PCR第一链cDNA合成第37-38页
        2.3 CmCHSA基因片段的克隆第38-43页
            2.3.1 RT-PCR反应第38-39页
            2.3.2 目的片段的回收第39-40页
            2.3.3 目的片段的连接第40-41页
            2.3.4 连接产物的转化及鉴定第41-43页
        2.4 CmCHSA基因的 3'RACE-PCR扩增第43-44页
        2.5 CmCHSA基因的生物信息学分析第44-45页
        2.6 CmCHSA基因时空表达的相对RT-qPCR分析第45-47页
        2.7 数据统计与分析第47页
    3 结果与分析第47-66页
        3.1 稻纵卷叶螟总RNA的提取第47-48页
        3.2 CmCHSA基因的克隆和序列分析第48-54页
        3.3 CmCHSA蛋白序列比对和系统进化树构建第54-60页
        3.4 CmCHSA蛋白结构分析第60-62页
        3.5 CmCHSA基因的时空表达分析第62-66页
    4 讨论第66-69页
第三章 注射双链RNA干扰稻纵卷叶螟几丁质合成酶A基因的表达第69-92页
    1 实验材料第70-71页
        1.1 供试昆虫第70页
        1.2 主要试剂与耗材第70-71页
        1.3 主要仪器第71页
    2 方法第71-81页
        2.1 靶位点设计与合成第71-72页
        2.2 合成dsRNA的引物设计第72-73页
        2.3 dsRNA的合成第73-79页
            2.3.1 高浓度模板的制备第73-76页
            2.3.2 dsRNA的合成及纯化第76-79页
        2.4 显微注射第79页
        2.5 RNAi沉默效应检测第79-81页
            2.5.1 取食情况观察第79页
            2.5.2 虫体表型的观察第79页
            2.5.3 定量PCR检测沉默效应第79-80页
            2.5.4 死亡率与校正死亡率的统计第80-81页
            2.5.5 数据统计与分析第81页
    3 结果与分析第81-89页
        3.1 dsRNA的合成第81-84页
            3.1.1 靶位点的克隆验证第81-82页
            3.1.2 高浓度模板的获得第82-83页
            3.1.3 dsRNA的合成第83-84页
        3.2 RNAi效应检测第84-89页
            3.2.1 取食情况观察第84-86页
            3.2.2 注射dsRNA对稻纵卷叶螟表型的影响第86-88页
            3.2.3 Cm CHSA基因的表达分析第88-89页
            3.2.4 死亡率与校正死亡率第89页
    4 讨论第89-92页
第四章 重组RNA干扰表达载体的构建与鉴定第92-112页
    1 实验材料第92-94页
        1.1 质粒、菌株第92-93页
        1.2 酶、试剂盒及引物第93页
        1.3 主要仪器第93页
        1.4 培养基第93-94页
            1.4.1 大肠杆菌培养基(LB)第94页
            1.4.2 农杆菌培养基(YEB)第94页
    2 方法第94-104页
        2.1 靶位点合成第94-96页
        2.2 质粒的提取第96-97页
        2.3 质粒的酶切回收第97-98页
            2.3.1 pUC57-CmCHSA-Ⅰ*和pUC57-CmCHSA-Ⅱ*的双酶切第97-98页
            2.3.2 p1301质粒的双酶切第98页
            2.3.3 目的片段的回收第98页
        2.4 重组表达载体的构建第98-99页
        2.5 重组表达载体的筛选第99页
        2.6 重组表达载体的鉴定第99-102页
            2.6.1 菌落PCR鉴定第100-101页
            2.6.2 双酶切检测第101页
            2.6.3 测序鉴定第101-102页
        2.7 农杆菌转化及鉴定第102-104页
            2.7.1 根癌农杆菌LBA4404感受态细胞的制备第102页
            2.7.2 重组表达载体的转化第102-103页
            2.7.3 重组表达载体转化根癌农杆菌的PCR鉴定第103-104页
    3 结果与分析第104-110页
        3.1 重组表达载体的构建第104-106页
            3.1.1 质粒的酶切回收第104-105页
            3.1.2 目的基因片段与p1301的连接第105-106页
        3.2 重组表达载体的鉴定第106-108页
            3.2.1 菌落PCR鉴定第106-107页
            3.2.2 双酶切鉴定第107-108页
            3.2.3 测序鉴定第108页
        3.3 重组表达载体转化农杆菌及鉴定第108-110页
    4 讨论第110-112页
第五章 水稻的遗传转化及转基因植株的检测第112-134页
    1 材料第113-116页
        1.1 供试水稻品种第113页
        1.2 农杆菌菌种第113页
        1.3 主要试剂及配方第113-114页
            1.3.1 主要试剂第113页
            1.3.2 主要试剂配方第113-114页
        1.4 主要仪器第114-115页
        1.5 主要培养基第115-116页
            1.5.1 农杆菌培养基(YEB)第115页
            1.5.2 转化水稻所用培养基第115-116页
    2 方法第116-122页
        2.1 农杆菌介导的水稻遗传转化第116-117页
            2.1.1 愈伤组织诱导及继代培养第116页
            2.1.2 农杆菌菌液制备第116-117页
            2.1.3 愈伤组织的浸染及共培养第117页
            2.1.4 脱菌第117页
        2.2 抗性愈伤的继代的筛选第117-118页
        2.3 转基因植株再生第118页
            2.3.1 抗性愈伤组织的分化第118页
            2.3.2 生根、炼苗及移栽第118页
        2.4 转基因植株的检测第118-120页
        2.5 转基因水稻RNAi效应检测第120-122页
            2.5.1 接虫第120页
            2.5.2 取食情况观察第120-121页
            2.5.3 虫体表型观察第121页
            2.5.4 定量PCR检测沉默效应第121-122页
            2.5.5 死亡率与校正死亡率的统计第122页
            2.5.6 数据统计与分析第122页
    3 结果与分析第122-131页
        3.1 转基因植株的获得第122-124页
        3.2 转基因植株的RT-PCR鉴定第124-125页
        3.3 转基因水稻的RNAi效应检测第125-131页
            3.3.1 取食情况观察第125-126页
            3.3.2 虫体表型观察第126-127页
            3.3.3 Cm CHSA表达分析第127-131页
            3.3.4 死亡率与校正死亡率计算第131页
    4 讨论第131-134页
第六章 结论与展望第134-137页
    1 结论第134-135页
    2 创新点第135页
    3 不足之处第135-136页
    4 展望第136-137页
致谢第137-139页
参考文献第139-148页
附录一第148-150页
附录二第150-151页
附图第151-152页

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