| 摘要 | 第5-8页 |
| ABSTRACT | 第8-10页 |
| 英文缩写索引 | 第14-15页 |
| 第一章 绪论 | 第15-25页 |
| 1.1 丙烯腈 | 第15-17页 |
| 1.1.1 丙烯腈理化性质及用途 | 第15页 |
| 1.1.2 丙烯腈接触机会与接触途径 | 第15页 |
| 1.1.3 丙烯腈代谢途径 | 第15-16页 |
| 1.1.4 丙烯腈毒性 | 第16-17页 |
| 1.1.5 细胞色素P4502E1 | 第17页 |
| 1.2 丙烯腈与硫化氢 | 第17-18页 |
| 1.3 硫化氢 | 第18-23页 |
| 1.3.1 硫化氢概述 | 第18-19页 |
| 1.3.2 内源性硫化氢生成、代谢与调节 | 第19-21页 |
| 1.3.3 硫化氢测定 | 第21-22页 |
| 1.3.4 内源性硫化氢生理作用 | 第22-23页 |
| 1.4 研究内容 | 第23-25页 |
| 1.4.1 研究目的和意义 | 第23页 |
| 1.4.2 实验设计思路 | 第23-24页 |
| 1.4.3 技术路线 | 第24-25页 |
| 第二章 丙烯腈对大鼠内源性硫化氢代谢影响的时间剂量效应关系研究 | 第25-45页 |
| 2.1.实验材料 | 第25-29页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第25页 |
| 2.1.2 实验仪器 | 第25-26页 |
| 2.1.3 实验试剂 | 第26-27页 |
| 2.1.4 主要试剂配制 | 第27-29页 |
| 2.2 实验方法 | 第29-34页 |
| 2.2.1 动物处理 | 第29页 |
| 2.2.2 组织匀浆制备 | 第29-30页 |
| 2.2.3 肝脏和大脑皮层中硫化氢含量测定 | 第30页 |
| 2.2.4 肝脏和大脑皮层中硫化氢合成酶活性检测 | 第30-31页 |
| 2.2.5 组织蛋白质提取 | 第31页 |
| 2.2.6 蛋白质定量 | 第31-32页 |
| 2.2.7 Western Blotting | 第32-33页 |
| 2.2.8 肝脏和大脑皮层组织中还原性GSH含量测定 | 第33-34页 |
| 2.2.9 肝脏和大脑皮层组织中MDA含量测定 | 第34页 |
| 2.2.10 肝脏和大脑皮层组织中ROS含量测定 | 第34页 |
| 2.3 数据分析 | 第34页 |
| 2.4 实验结果 | 第34-41页 |
| 2.4.1 急性AN染毒对大鼠行为影响 | 第34-35页 |
| 2.4.2 AN对大鼠肝脏和大脑皮层中内源性H2S含量的影响 | 第35-36页 |
| 2.4.3 AN对大鼠肝脏和大脑皮层中内源性H2S生成酶活性的影响 | 第36-37页 |
| 2.4.4 AN对大鼠肝脏H2S生成酶蛋白表达的影响 | 第37-38页 |
| 2.4.5 AN对大鼠大脑皮层H2S生成酶蛋白表达的影响 | 第38-39页 |
| 2.4.6 AN对大鼠肝脏和大脑皮层还原性GSH含量的影响 | 第39-40页 |
| 2.4.7 AN对大鼠肝脏和大脑皮层MDA含量的影响 | 第40页 |
| 2.4.8 AN对大鼠肝脏和大脑皮层ROS含量的影响 | 第40-41页 |
| 2.5 讨论 | 第41-45页 |
| 第三章 CYP 2E1活性调控对丙烯腈染毒大鼠内源性硫化氢代谢的影响 | 第45-58页 |
| 3.1.实验材料 | 第45-46页 |
| 3.1.1 实验动物 | 第45页 |
| 3.1.2 实验仪器 | 第45页 |
| 3.1.3 实验试剂 | 第45-46页 |
| 3.2 实验方法 | 第46-47页 |
| 3.2.1 制备肝微粒体 | 第46页 |
| 3.2.2 BCA法测定蛋白浓度 | 第46页 |
| 3.2.3 肝CYP 2E1活性测定 | 第46-47页 |
| 3.2.4 肝脏和大脑皮层中硫化氢含量测定 | 第47页 |
| 3.2.5 肝脏和大脑皮层中硫化氢生成酶活性含量测定 | 第47页 |
| 3.2.6 Western Blotting | 第47页 |
| 3.3 数据分析 | 第47页 |
| 3.4 结果 | 第47-55页 |
| 3.4.1 CYP 2E1抑制剂预处理对AN染毒大鼠内源性H2S代谢的影响 | 第47-51页 |
| 3.4.2 CYP 2E1诱导剂预处理对AN染毒大鼠内源性H2S代谢的影响 | 第51-55页 |
| 3.5 讨论 | 第55-58页 |
| 第四章 结论与展望 | 第58-59页 |
| 参考文献 | 第59-68页 |
| 致谢 | 第68-69页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文及参加的学术会议 | 第69-70页 |
