摘要 | 第4-7页 |
ABSTRACT | 第7-9页 |
英文缩略词表 | 第14-17页 |
1 引言 | 第17-21页 |
2 牛蒡子苷元对单侧输尿管梗阻大鼠肾间质炎症及纤维化的保护作用及其机制 | 第21-47页 |
2.1 实验材料 | 第21-25页 |
2.1.1 实验动物 | 第21页 |
2.1.2 主要试剂 | 第21-23页 |
2.1.3 主要仪器 | 第23页 |
2.1.4 一抗抗体来源 | 第23页 |
2.1.5 主要溶剂配制 | 第23-25页 |
2.2 实验方法 | 第25-32页 |
2.2.1 UUO动物实验 | 第25-26页 |
2.2.2 生化指标检查 | 第26页 |
2.2.3 组织病理学检测 | 第26-28页 |
2.2.4 免疫印迹 | 第28-29页 |
2.2.5 实时荧光定量PCR | 第29-32页 |
2.2.6 统计学分析 | 第32页 |
2.3 实验结果 | 第32-42页 |
2.3.1 ATG对肾脏病理组织学的影响 | 第32-34页 |
2.3.2 ATG对肾脏EMT进程的影响 | 第34-38页 |
2.3.3 ATG对肾脏组织炎症的影响 | 第38-41页 |
2.3.4 ATG对肾脏组织氧化应激的影响 | 第41-42页 |
2.4 讨论 | 第42-47页 |
3 牛蒡子苷元对TGF-B1刺激的人肾小管上皮细胞炎症及上皮间质转分化的调控作用及机制研究 | 第47-85页 |
3.1 实验材料 | 第47-51页 |
3.1.1 细胞株与菌株 | 第47-48页 |
3.1.2 主要试剂 | 第48页 |
3.1.3 一抗抗体来源 | 第48-49页 |
3.1.4 主要仪器 | 第49页 |
3.1.5 主要试剂配制 | 第49-51页 |
3.2 实验方法 | 第51-57页 |
3.2.1 细胞株、冻存及复苏 | 第51页 |
3.2.2 细胞内活性氧水平检测 | 第51页 |
3.2.3 蛋白印迹 | 第51-52页 |
3.2.4 细胞免疫荧光 | 第52-53页 |
3.2.5 实时荧光定量PCR | 第53-54页 |
3.2.6 细胞划痕实验 | 第54页 |
3.2.7 细胞侵袭实验 | 第54-55页 |
3.2.8 MCP-1过表达载体及细胞转染 | 第55-56页 |
3.2.9 统计学分析 | 第56-57页 |
3.3 实验结果 | 第57-80页 |
3.3.1 ATG抑制TGF-β1诱导的MCP-1表达上调及EMT进程 | 第57-65页 |
3.3.2 NADPH氧化酶介导的活性氧参与TGF-β1诱导的MCP-1表达上调及EMT进程 | 第65-66页 |
3.3.3 ATG对TGF-β1诱导的活性氧水平的影响 | 第66-68页 |
3.3.4 ATG对TGF-β1诱导的NOX及其调节亚基蛋白表达的影响 | 第68-71页 |
3.3.5 ATG对TGF-β1诱导的ERK1/2 MAPK,Akt激酶以及NF-κB活化的影响 | 第71-75页 |
3.3.6 ERK1/2 MAPK参与TGF-β1诱导的MCP-1蛋白表达和EMT进程 | 第75-76页 |
3.3.7 ATG对活性氧介导的ERK1/2的磷酸化水平的影响 | 第76页 |
3.3.8 ATG对NF-κB核移位能力的影响 | 第76-77页 |
3.3.9 NF-κB介导TGF-β1诱导的MCP-1基因表达 | 第77-78页 |
3.3.10 ATG通过抑制MCP-1的表达上调,进而介导其对EMT进程的逆转 | 第78-79页 |
3.3.11 MCP-1不依赖TGF-β1直接启动EMT进程 | 第79-80页 |
3.4 讨论 | 第80-85页 |
4 全文总结 | 第85-87页 |
致谢 | 第87-89页 |
参考文献 | 第89-95页 |
附图 | 第95-101页 |
个人简历、在校期间发表的学术论文及取得的研究成果 | 第101页 |