摘要 | 第6-8页 |
ABSTRACT | 第8-10页 |
第1章 文献综述 | 第11-27页 |
1.1 植物叶片衰老的研究 | 第11-17页 |
1.1.1 叶片衰老的特征 | 第11页 |
1.1.2 叶片衰老的机制研究 | 第11-12页 |
1.1.3 影响叶片衰老的调控因素 | 第12-16页 |
1.1.4 叶片衰老的三个阶段 | 第16-17页 |
1.2 水稻叶片早衰突变体的研究 | 第17-21页 |
1.2.1 早衰突变体的研究进展 | 第17-19页 |
1.2.2 早衰相关基因的研究进展 | 第19-21页 |
1.3 水稻叶片淀粉代谢的研究 | 第21-27页 |
1.3.1 叶片淀粉合成代谢 | 第21-22页 |
1.3.2 叶片淀粉分解代谢 | 第22-24页 |
1.3.3 叶片淀粉积累的调控 | 第24-27页 |
第2章 引言 | 第27-29页 |
2.1 研究目的及意义 | 第27页 |
2.2 技术路线 | 第27-29页 |
第3章 材料与方法 | 第29-45页 |
3.1 实验材料 | 第29-31页 |
3.1.1 植物材料 | 第29页 |
3.1.2 菌种与质粒 | 第29页 |
3.1.3 分子生物学试剂和试剂盒 | 第29页 |
3.1.4 试剂配方 | 第29-31页 |
3.1.5 仪器设备 | 第31页 |
3.2 表型鉴定与农艺性状调查 | 第31-32页 |
3.3 光合色素含量和净光合速率测定 | 第32页 |
3.4 衰老相关生理指标测定 | 第32-33页 |
3.5 细胞学观察 | 第33-34页 |
3.5.1 冷冻切片观察 | 第33页 |
3.5.2 透射电镜观察 | 第33-34页 |
3.6 叶片碘-碘化钾染色及淀粉含量测定 | 第34页 |
3.7 基因定位 | 第34-38页 |
3.7.1 基因组DNA的提取 | 第34-35页 |
3.7.2 分子标记的开发 | 第35-36页 |
3.7.3 PCR反应 | 第36-37页 |
3.7.4 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第37页 |
3.7.5 基因定位与遗传图谱构建 | 第37-38页 |
3.8 候选基因分析 | 第38-40页 |
3.8.1 PCR产物的回收 | 第38-39页 |
3.8.2 PCR产物的连接 | 第39页 |
3.8.3 遗传转化 | 第39-40页 |
3.9 相关基因表达分析 | 第40-45页 |
3.9.1 总RNA的提取 | 第40-41页 |
3.9.2 RNA的纯化 | 第41-42页 |
3.9.3 反转录反应 | 第42-43页 |
3.9.4 实时荧光定量PCR (quantitative Real-time PCR, qRT-PCR) | 第43-45页 |
第4章 结果与分析 | 第45-57页 |
4.1 形态及农艺性状分析 | 第45-46页 |
4.2 光合色素含量和光合特性分析 | 第46-48页 |
4.3 细胞学观察 | 第48-49页 |
4.4 叶片淀粉含量分析 | 第49-50页 |
4.5 叶片淀粉代谢相关基因的表达分析 | 第50-51页 |
4.6 衰老相关的生理指标分析 | 第51-52页 |
4.7 衰老相关基因的表达分析 | 第52-53页 |
4.8 遗传分析 | 第53页 |
4.9 基因定位与候选基因分析 | 第53-57页 |
4.9.1 基因定位 | 第53-55页 |
4.9.2 候选基因分析 | 第55-57页 |
第5章 讨论与结论 | 第57-61页 |
5.1 讨论 | 第57-60页 |
5.1.1 esl9是一个新型的叶片淀粉积累及早衰突变体 | 第57页 |
5.1.2 突变体esl9基因突变引起光合色素含量和农艺性状变化 | 第57-58页 |
5.1.3 突变体esl9基因突变引起叶片淀粉积累 | 第58页 |
5.1.4 突变体esl9叶片淀粉积累引起细胞结构的变化 | 第58页 |
5.1.5 突变体esl9叶绿体破坏引起活性氧的积累 | 第58-59页 |
5.1.6 突变体esl9基因突变引起其他衰老相关基因的表达变化 | 第59页 |
5.1.7 突变体esl9的基因定位及候选基因分析 | 第59-60页 |
5.2 主要结论 | 第60-61页 |
参考文献 | 第61-71页 |
致谢 | 第71-73页 |
在校期间所参加的科研课题和发表论文 | 第73页 |