| 符号、缩略词术语注释表 | 第14-16页 |
| 中文摘要 | 第16-18页 |
| ABSTRACT | 第18-21页 |
| 第一章 引言 | 第22-25页 |
| 1.1 立题背景及意义 | 第22-23页 |
| 1.2 研究内容、技术流程图及创新点 | 第23-25页 |
| 1.2.1 研究内容 | 第23-24页 |
| 1.2.2 技术路线图 | 第24页 |
| 1.2.3 创新点 | 第24-25页 |
| 第二章 文献综述 | 第25-29页 |
| 2.1 糖谱技术及其研究进展 | 第25-26页 |
| 2.1.1 电泳法构建糖谱方法 | 第25页 |
| 2.1.2 高效薄层色谱构建糖谱法 | 第25-26页 |
| 2.1.3 高效液相色谱构建糖谱法 | 第26页 |
| 2.2 多糖的结构解析 | 第26-28页 |
| 2.2.1 单糖组成分析 | 第27页 |
| 2.2.2 糖苷键连接位置的测定 | 第27页 |
| 2.2.3 多糖结构验证 | 第27-28页 |
| 2.3 黄芪多糖免疫药理活性的研究进展 | 第28-29页 |
| 第三章 基于部分酸水解构建黄芪多糖糖谱及黄芪差异性糖片段的筛选 | 第29-43页 |
| 3.1 引言 | 第29页 |
| 3.2 材料和仪器 | 第29-30页 |
| 3.2.1 植物材料 | 第29页 |
| 3.2.2 试剂 | 第29页 |
| 3.2.3 仪器 | 第29-30页 |
| 3.3 实验方法 | 第30-32页 |
| 3.3.1 黄芪多糖的制备与纯化 | 第30-31页 |
| 3.3.2 黄芪多糖部分酸水解及衍生化方法的建立 | 第31页 |
| 3.3.3 聚丙烯酰胺凝胶电泳方法的建立 | 第31-32页 |
| 3.3.4 高效薄层色谱方法的建立 | 第32页 |
| 3.3.5 单糖及寡糖标准品的制备 | 第32页 |
| 3.3.6 数据处理 | 第32页 |
| 3.4 实验结果 | 第32-42页 |
| 3.4.1 黄芪多糖的纯度及得率 | 第32-33页 |
| 3.4.2 黄芪多糖TFA水解反应条件的优化 | 第33页 |
| 3.4.3 黄芪多糖ANTS衍生化反应条件的优化 | 第33页 |
| 3.4.4 电泳条件的优化 | 第33页 |
| 3.4.5 HPTLC分析条件的优化 | 第33页 |
| 3.4.6 不同种质资源黄芪多糖部分酸水解产物的PACE和HPTLC图谱 | 第33页 |
| 3.4.7 不同种质资源黄芪多糖部分酸水解产物PACE和HPTLC图谱的数据分析 | 第33-41页 |
| 3.4.8 不同种质资源黄芪多糖部分酸水解产物PACE图谱的聚类分析 | 第41-42页 |
| 3.5 小结 | 第42-43页 |
| 第四章 黄芪专属性糖片段的确认与活性评价 | 第43-55页 |
| 4.1 引言 | 第43页 |
| 4.2 材料和仪器 | 第43页 |
| 4.2.1 植物材料 | 第43页 |
| 4.2.2 试剂 | 第43页 |
| 4.2.3 仪器 | 第43页 |
| 4.3 实验方法 | 第43-47页 |
| 4.3.1 黄芪差异性糖片段的纯化及结构解析 | 第43-45页 |
| 4.3.2 黄芪专属性糖片段的确认 | 第45页 |
| 4.3.3 体外抗氧化活性评价 | 第45-46页 |
| 4.3.4 免疫活性评价 | 第46-47页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第47-54页 |
| 4.4.1 黄芪差异性糖片段的结构解析 | 第47-50页 |
| 4.4.2 黄芪专属性糖片段的确认 | 第50-51页 |
| 4.4.3 黄芪专属性糖片段的体外抗氧化活性分析 | 第51-52页 |
| 4.4.4 黄芪专属性糖片段的免疫活性分析 | 第52-54页 |
| 4.5 小结 | 第54-55页 |
| 第五章 建立黄芪专属性活性糖片段含量测定方法及不同种质资源黄芪的评价 | 第55-59页 |
| 5.1 引言 | 第55页 |
| 5.2 材料和仪器 | 第55页 |
| 5.2.1 植物材料 | 第55页 |
| 5.2.2 试剂 | 第55页 |
| 5.2.3 仪器 | 第55页 |
| 5.3 实验方法 | 第55-56页 |
| 5.3.1 线性关系考察 | 第55-56页 |
| 5.3.2 重复性 | 第56页 |
| 5.3.3 稳定性 | 第56页 |
| 5.3.4 检测限 | 第56页 |
| 5.3.5 不同种质资源黄芪的评价 | 第56页 |
| 5.4 结果 | 第56-58页 |
| 5.4.1 方法学考察 | 第56-57页 |
| 5.4.2 不同种质资源黄芪的评价 | 第57-58页 |
| 5.5 小结 | 第58-59页 |
| 第六章 基于酶水解和人工胃液水解构建黄芪多糖糖谱及不同种质资源黄芪的鉴别 | 第59-95页 |
| 6.1 引言 | 第59页 |
| 6.2 材料与方法 | 第59-60页 |
| 6.2.1 植物材料 | 第59页 |
| 6.2.2 仪器与试剂 | 第59-60页 |
| 6.3 实验方法 | 第60-61页 |
| 6.3.1 黄芪多糖的提取和纯化 | 第60页 |
| 6.3.2 人工胃液的配制 | 第60页 |
| 6.3.3 模拟人工胃液的黄芪多糖降解 | 第60页 |
| 6.3.4 黄芪多糖的酶解 | 第60-61页 |
| 6.3.5 黄芪多糖的酶解和人工胃液水解产物的衍生化电泳分析 | 第61页 |
| 6.3.6 数据处理 | 第61页 |
| 6.4 实验结果 | 第61-94页 |
| 6.4.1 不同种质资源黄芪多糖酶解产物的电泳指纹图谱 | 第61-67页 |
| 6.4.2 不同种质资源黄芪多糖人工胃液水解产物的电泳指纹图谱 | 第67-68页 |
| 6.4.3 不同种质资源黄芪多糖酶解产物PACE图谱的数据分析 | 第68-92页 |
| 6.4.4 不同种质资源黄芪多糖人工胃液水解产物PACE图谱的数据分析 | 第92-94页 |
| 6.5 小结 | 第94-95页 |
| 第七章 总结与展望 | 第95-97页 |
| 7.1 研究工作总结 | 第95-96页 |
| 7.2 展望 | 第96页 |
| 7.3 学习心得 | 第96-97页 |
| 参考文献 | 第97-104页 |
| 攻读学位期间取得的研究成果 | 第104-105页 |
| 致谢 | 第105-106页 |
| 个人简况及联系方式 | 第106-107页 |
