| 摘要 | 第3-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 1 引言 | 第10-20页 |
| 1.1 犬间充质干细胞的来源 | 第11页 |
| 1.2 犬间充质干细胞的鉴定 | 第11-12页 |
| 1.3 间充质干细胞的免疫调节作用 | 第12-15页 |
| 1.3.1 间充质干细胞对T细胞和B细胞的影响 | 第13-14页 |
| 1.3.2 间充质干细胞对先天免疫的影响 | 第14-15页 |
| 1.4 犬间充质干细胞的应用 | 第15-18页 |
| 1.4.1 骨损伤 | 第15-16页 |
| 1.4.2 关节软骨损伤 | 第16页 |
| 1.4.3 椎间盘退变 | 第16页 |
| 1.4.4 脊髓损伤 | 第16-17页 |
| 1.4.5 心脏病 | 第17页 |
| 1.4.6 皮肤损伤 | 第17-18页 |
| 1.5 存在问题和展望 | 第18页 |
| 1.6 本研究的目的和意义 | 第18-20页 |
| 2 实验部分 | 第20-26页 |
| 2.1 实验材料 | 第20页 |
| 2.1.1 实验动物 | 第20页 |
| 2.1.2 仪器设备 | 第20页 |
| 2.1.3 主要试剂 | 第20页 |
| 2.2 实验方法 | 第20-26页 |
| 2.2.1 cAMSCs的分离培养 | 第20-21页 |
| 2.2.2 cAMSCs的传代培养 | 第21页 |
| 2.2.3 cAMSCs的生长曲线测定 | 第21页 |
| 2.2.4 免疫荧光检测Vimentin和SSEA-4的表达 | 第21-22页 |
| 2.2.5 细胞总RNA的提取 | 第22页 |
| 2.2.6 RT-PCR检测干细胞标志基因OCT4、SOX2及NANOG的表达 | 第22页 |
| 2.2.7 流式细胞术鉴定细胞表面标志 | 第22页 |
| 2.2.8 cAMSCs的成骨诱导分化 | 第22-23页 |
| 2.2.9 cAMSCs的成脂诱导分化 | 第23-24页 |
| 2.2.10 cAMSCs的成神经诱导分化 | 第24页 |
| 2.2.11 cAMSCs的成胰岛诱导分化 | 第24页 |
| 2.2.12 环磷酰胺诱导小鼠血小板减少症模型的制备及细胞移植 | 第24页 |
| 2.2.13 外周血血常规检查 | 第24-25页 |
| 2.2.14 数据统计分析 | 第25-26页 |
| 3 实验结果 | 第26-37页 |
| 3.1 cAMSCs的形态观察 | 第26-27页 |
| 3.2 cAMSCs的生长曲线 | 第27页 |
| 3.3 免疫荧光检测Vimentin和SSEA-4的表达 | 第27-29页 |
| 3.4 RT-PCR检测OCT4、SOX2及NANOG | 第29页 |
| 3.5 cAMSCs细胞表面标志的表达 | 第29-30页 |
| 3.6 成骨诱导分化及鉴定 | 第30-32页 |
| 3.7 成脂诱导分化及鉴定 | 第32-33页 |
| 3.8 成神经诱导分化及鉴定 | 第33-34页 |
| 3.9 成胰岛诱导分化及鉴定 | 第34页 |
| 3.10 环磷酰胺诱导小鼠血小板减少后各组小鼠血小板值的变化 | 第34-35页 |
| 3.11 cAMSCs移植前后各组小鼠血小板值的变化 | 第35-37页 |
| 4 讨论 | 第37-42页 |
| 4.1 cAMSCs的分离培养 | 第37页 |
| 4.2 cAMSCs的生物学特性 | 第37-38页 |
| 4.3 cAMSCs的分化潜能 | 第38-40页 |
| 4.4 cAMSCs移植治疗小鼠血小板减少症 | 第40-42页 |
| 5 结论 | 第42-43页 |
| 致谢 | 第43-44页 |
| 参考文献 | 第44-51页 |
| 作者简介 | 第51页 |
