| 中文摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-10页 |
| 第1章 绪论 | 第10-22页 |
| ·引言 | 第10-11页 |
| ·神经导管在组织修复中的诱导作用 | 第11-13页 |
| ·神经导管提供诱导发生的空间 | 第11-12页 |
| ·神经导管中复合神经生长因子对神经再生的作用 | 第12-13页 |
| ·PC12细胞在研究神经再生中的应用 | 第13-14页 |
| ·ERK1/2蛋白磷酸化及β-tubulin在PC12细胞分化转导中的表达意义 | 第14-16页 |
| ·ELISA方法和westerblot实验技术 | 第16-20页 |
| ·ELISA实验方法 | 第16-18页 |
| ·westerblot实验技术 | 第18-20页 |
| ·本文选题的目的及研究内容 | 第20-22页 |
| ·课题的研究目的及意义 | 第20页 |
| ·研究内容 | 第20-22页 |
| 第2章 多种细胞与PDLLA/β-TCP/PRGD/NGF复合材料共培养的形貌观察 | 第22-32页 |
| ·引言 | 第22-23页 |
| ·实验仪器与试剂 | 第23-24页 |
| ·实验设备 | 第23-24页 |
| ·主要试剂 | 第24页 |
| ·实验方法 | 第24-26页 |
| ·细胞培养 | 第24页 |
| ·材料的准备 | 第24-25页 |
| ·材料与PC12细胞的共培养 | 第25页 |
| ·SEM电镜样品的制作 | 第25-26页 |
| ·电镜测试 | 第26页 |
| ·结果与讨论 | 第26-30页 |
| ·小鼠脑神经瘤细胞Neuro-2A的生长形貌 | 第26-27页 |
| ·神经母细胞瘤细胞SK-N-SH在两种材料上的生长形貌 | 第27-29页 |
| ·PC12细胞在PDLLA/β-TCP/PRGD/NGF表面的生长形貌 | 第29-30页 |
| ·本章结论 | 第30-32页 |
| 第三章 材料浸提液的制备及细胞总蛋白的提取和定量 | 第32-50页 |
| ·前言 | 第32-37页 |
| ·总蛋白的提取与定量 | 第32-35页 |
| ·ERK1/2蛋白磷酸化的ELISA检测 | 第35-37页 |
| ·实验仪器与试剂 | 第37-38页 |
| ·实验方法 | 第38-41页 |
| ·材料浸提液的制备 | 第38页 |
| ·PC12细胞培养 | 第38页 |
| ·PC12细胞与浸提液的共培养 | 第38-39页 |
| ·总蛋白收集 | 第39页 |
| ·总蛋白的定量 | 第39-40页 |
| ·ELISA实验 | 第40-41页 |
| ·实验结果与讨论 | 第41-49页 |
| ·材料浸提液与PC12细胞共培养的结果 | 第41-42页 |
| ·对细胞总蛋白的定量结果 | 第42-45页 |
| ·ELISA实验结果 | 第45-49页 |
| ·本章实验小结 | 第49-50页 |
| 第4章 ERK1/2蛋白磷酸化及Ⅲ型β-tubulin表达的westernblot实验研究 | 第50-62页 |
| ·前言 | 第50-51页 |
| ·实验仪器及试剂 | 第51-52页 |
| ·实验步骤 | 第52-55页 |
| ·材料浸提液与PC12细胞共培养 | 第52-53页 |
| ·细胞蛋白样品的处理 | 第53页 |
| ·SDS-PAGE电泳 | 第53-54页 |
| ·湿法转膜 | 第54页 |
| ·染膜 | 第54-55页 |
| ·封闭 | 第55页 |
| ·一抗孵育 | 第55页 |
| ·二抗孵育 | 第55页 |
| ·显色 | 第55页 |
| ·实验结果与讨论 | 第55-60页 |
| ·本章小结 | 第60-62页 |
| 第5章 结论与展望 | 第62-64页 |
| ·结论 | 第62页 |
| ·展望 | 第62-64页 |
| 参考文献 | 第64-67页 |
| 致谢 | 第67-68页 |
| 附录:攻读硕士学位期间发表的论文 | 第68页 |
