| 中文摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-8页 |
| 第1章 引言 | 第8-22页 |
| ·神经导管材料用于修复外周神经损伤的进展 | 第8-13页 |
| ·神经导管 | 第8-9页 |
| ·周围神经再生的微环境 | 第9-13页 |
| ·NGF诱导神经细胞分化的机制 | 第13-18页 |
| ·TrkA受体蛋白 | 第15页 |
| ·Ras/MAPK信号通路 | 第15-16页 |
| ·VGF基因 | 第16-17页 |
| ·Rab-1转运蛋白 | 第17页 |
| ·细胞结构蛋白:β-TubulinⅡ和GAP43蛋白 | 第17-18页 |
| ·实时荧光定量PCR检测MRNA表达量变化规律 | 第18-21页 |
| ·什么是实时荧光定量PCR | 第19页 |
| ·实时荧光定量PCR工作原理 | 第19-20页 |
| ·DNA结合染料(SYBR Green Ⅰ) | 第20-21页 |
| ·论文选题目的和研究内容 | 第21-22页 |
| ·课题研究的意义和目的 | 第21页 |
| ·课题的研究内容 | 第21-22页 |
| 第2章 材料在体外NGF缓释性能的研究 | 第22-28页 |
| ·实验仪器和试剂 | 第22-23页 |
| ·实验方法 | 第23-25页 |
| ·神经导管材料的制备 | 第23-24页 |
| ·浸提液的制备 | 第24页 |
| ·ELISA法检测浸提液中NGF含量 | 第24-25页 |
| ·实验结果和讨论 | 第25-27页 |
| ·标准品NGF含量测定 | 第25-26页 |
| ·PRGD/PDLLA/β-TCP/NGF复合材料NGF的释放 | 第26-27页 |
| 本章小结 | 第27-28页 |
| 第3章 材料浸提液诱导PC12细胞分化形态学观察 | 第28-33页 |
| ·实验仪器和试剂 | 第28-29页 |
| ·实验方法 | 第29-30页 |
| ·浸提液的稀释 | 第29-30页 |
| ·细胞培养和实验分组 | 第30页 |
| ·实验结果与讨论 | 第30-32页 |
| ·各组PC12细胞形态学特征 | 第30-31页 |
| ·显微镜测微尺鉴定PC12细胞的分化 | 第31-32页 |
| 本章小结 | 第32-33页 |
| 第4章 REAL-TIME PCR引物的设计及其优化 | 第33-44页 |
| ·实验仪器和试剂 | 第34-35页 |
| ·实验方法 | 第35-36页 |
| ·引物设计 | 第35-36页 |
| ·引物的合成与稀释 | 第36页 |
| ·引物的评定 | 第36页 |
| ·实验结果 | 第36-43页 |
| ·引物的合成 | 第37页 |
| ·引物特异性 | 第37-40页 |
| ·引物的扩增效率 | 第40-43页 |
| 本章小结 | 第43-44页 |
| 第5章 荧光定量PCR法检测PC12细胞分化相关基因表达变化规律 | 第44-55页 |
| ·实验主要仪器和试剂 | 第44-45页 |
| ·实验方法 | 第45-50页 |
| ·实验分组和细胞培养 | 第45-46页 |
| ·Trizol法提取PC12细胞总RNA | 第46-47页 |
| ·RNA质量分析 | 第47-48页 |
| ·总RNA逆转录cDNA样品 | 第48页 |
| ·实时荧光定量PCR(Real-time PCR) | 第48-49页 |
| ·2~(-ΔΔCT)相对定量法分析目的基因的mRNA变化倍数 | 第49-50页 |
| ·统计学处理分析 | 第50页 |
| ·实验结果 | 第50-54页 |
| ·RNA1.0%琼脂糖凝胶电泳图 | 第50-51页 |
| ·TrkA、Rab-1、VGF、GAP43、β-Tubulin基因mRNA表达规律 | 第51-54页 |
| 本章小结 | 第54-55页 |
| 第6章 结论 | 第55页 |
| 展望 | 第55-56页 |
| 参考文献 | 第56-60页 |
| 致谢 | 第60-61页 |
| 附录:攻读硕士学位期间发表的论文 | 第61页 |
