缩略词表 | 第1-8页 |
摘要 | 第8-10页 |
ABSTRACT | 第10-12页 |
前言 | 第12-16页 |
参考文献 | 第14-16页 |
第一部分 实验研究内容 | 第16-50页 |
摘要 | 第16-17页 |
引言 | 第17-19页 |
1. 材料与方法 | 第19-27页 |
·仪器设备与实验材料 | 第19-21页 |
·主要仪器设备 | 第19页 |
·实验动物 | 第19-20页 |
·主要实验耗材 | 第20页 |
·卵母细胞成熟和胚胎发育相关试剂 | 第20页 |
·实时荧光定量PCR相关试剂 | 第20页 |
·免疫印迹相关试剂 | 第20-21页 |
·免疫荧光化学相关试剂 | 第21页 |
·实验方法 | 第21-27页 |
·小鼠卵母细胞培养液的配制 | 第21页 |
·收集不同时期小鼠卵母细胞及药物处理卵母细胞 | 第21-22页 |
·体外受精、胚胎培养和早期胚胎的收集 | 第22页 |
·SYBR Green荧光定量PCR法检测Ck1α mRNA表达量 | 第22-24页 |
·免疫印迹 | 第24-25页 |
·免疫荧光化学 | 第25-26页 |
·Ck1α-MO显微注射小鼠卵母细胞 | 第26-27页 |
·极体的测量 | 第27页 |
·统计数据和数据处理 | 第27页 |
2. 结果 | 第27-43页 |
·卵母细胞减数分裂成熟以及早期胚胎发育过程中Ck1α mRNA、蛋白表达量与亚细胞定位 | 第27-30页 |
·卵母细胞减数分裂成熟以及早期胚胎发育过程中Ck1α mRNA表达量 | 第27-29页 |
·卵母细胞减数分裂成熟以及早期胚胎发育过程中CK1α蛋白表达量 | 第29-30页 |
·卵母细胞减数分裂成熟以及早期胚胎发育过程中CK1α的亚细胞定位 | 第30页 |
·干扰CK1α的表达影响卵母细胞减数分裂成熟并导致染色体异常 | 第30-34页 |
·蛋白印迹检测Ck1α-MO的干扰效率 | 第30-32页 |
·CK1α的敲减导致减数分裂过程中染色体排列、分离异常 | 第32-34页 |
·抑制CK1α的活性导致减数分裂异常 | 第34-39页 |
·D4476 EC50的浓度选择 | 第34-35页 |
·D4476处理卵母细胞影响CK1α蛋白水平 | 第35-36页 |
·D4476处理卵母细胞影响极体的排放率及导致极体与染色体异常 | 第36-39页 |
·D4476处理卵母细胞影响胚胎发育 | 第39页 |
·激活CK1α导致卵母细胞减数分裂异常 | 第39-43页 |
·PP EC50的浓度选择 | 第39-40页 |
·PP影响卵母细胞减数分裂 | 第40-42页 |
·PP导致卵母细胞染色体异常 | 第42-43页 |
3. 讨论 | 第43-47页 |
参考文献 | 第47-50页 |
第二部分 文献综述 | 第50-63页 |
摘要 | 第50页 |
前言 | 第50-51页 |
1 纺锤体装配检验点 | 第51-54页 |
2 黏连蛋白在染色体分离中的作用 | 第54-56页 |
3 蛋白激酶在染色体分离中的作用 | 第56-58页 |
参考文献 | 第58-63页 |
致谢 | 第63-65页 |
攻读硕士期间发表的论文 | 第65页 |