| 摘要 | 第1-5页 |
| Abstract | 第5-15页 |
| 1 引言 | 第15-29页 |
| ·脑缺血再灌注损伤机制研究进展 | 第15-24页 |
| ·自由基与脑缺血再灌注损伤 | 第15-17页 |
| ·兴奋性氨基酸与脑缺血再灌注损伤 | 第17-18页 |
| ·线粒体与脑缺血再灌注损伤 | 第18-19页 |
| ·一氧化氮与脑缺血再灌注损伤 | 第19-20页 |
| ·钙超载与脑缺血再灌注损伤 | 第20-21页 |
| ·炎症反应与脑缺血再灌注损伤 | 第21-22页 |
| ·细胞凋亡与脑缺血再灌注损伤 | 第22页 |
| ·细胞信号转导通路与脑缺血再灌注损伤 | 第22-24页 |
| ·瓜子金药理作用研究进展 | 第24-26页 |
| ·抗炎镇痛活性 | 第24-25页 |
| ·改善学习记忆障碍 | 第25页 |
| ·抗癌活性 | 第25页 |
| ·抗抑郁作用 | 第25页 |
| ·促进神经元细胞生长活性 | 第25页 |
| ·神经细胞保护作用 | 第25-26页 |
| ·其它 | 第26页 |
| ·本研究的目的和意义 | 第26-29页 |
| 2 瓜子金皂苷己对 PC12 细胞生物及化学损伤的保护作用及抗神经炎症作用的初步观察 | 第29-34页 |
| ·试验材料 | 第29页 |
| ·细胞株 | 第29页 |
| ·药物与试剂 | 第29页 |
| ·主要仪器设备 | 第29页 |
| ·试验方法 | 第29-31页 |
| ·细胞培养及分组 | 第29-30页 |
| ·去血清模型的制备 | 第30页 |
| ·过氧化氢损伤模型的制备 | 第30页 |
| ·低糖低氧模型的制备 | 第30页 |
| ·MPP~+ 损伤模型的制备 | 第30页 |
| ·LPS 诱导 BV-2 细胞神经炎症模型的制备 | 第30页 |
| ·细胞存活率检测 | 第30-31页 |
| ·TNF-α浓度测定 | 第31页 |
| ·统计学处理 | 第31页 |
| ·试验结果 | 第31-33页 |
| ·PGSF 对去血清损伤的 PC12 细胞存活率的影响 | 第31页 |
| ·PGSF 对过氧化氢损伤的 PC12 细胞存活率的影响 | 第31-32页 |
| ·PGSF 对低糖低氧损伤的 PC12 细胞存活率的影响 | 第32页 |
| ·PGSF对MPP+ 损伤的PC12 细胞存活率的影响 | 第32-33页 |
| ·PGSF 对 LPS 诱导 BV-2 细胞释放 TNF-α的影响 | 第33页 |
| ·小结 | 第33-34页 |
| 3 瓜子金皂苷己对 PC12 细胞拟缺血再灌注损伤的保护作用 | 第34-48页 |
| ·试验材料 | 第34-35页 |
| ·细胞株 | 第34页 |
| ·药物与试剂 | 第34页 |
| ·主要仪器设备 | 第34-35页 |
| ·试验方法 | 第35-37页 |
| ·细胞培养 | 第35页 |
| ·模型制备及分组 | 第35页 |
| ·细胞存活率检测 | 第35页 |
| ·细胞形态观察 | 第35页 |
| ·流式细胞术检测细胞凋亡 | 第35页 |
| ·线粒体膜电位测定 | 第35-36页 |
| ·细胞内活性氧测定 | 第36页 |
| ·免疫印迹法检测凋亡相关蛋白表达 | 第36-37页 |
| ·统计学处理 | 第37页 |
| ·试验结果 | 第37-47页 |
| ·OGD/R 损伤 PC12 细胞的浓度－效应关系 | 第37-38页 |
| ·OGD/R 损伤 PC12 细胞的时间－效应关系 | 第38-41页 |
| ·PGSF 对 OGD/R 损伤的 PC12 细胞存活率的影响 | 第41页 |
| ·PGSF 对 OGD/R 损伤的 PC12 细胞形态的影响 | 第41-43页 |
| ·PGSF 对 OGD/R 损伤的 PC12 细胞凋亡率的影响 | 第43-44页 |
| ·PGSF 对 OGD/R 损伤的 PC12 细胞线粒体膜电位的影响 | 第44-46页 |
| ·PGSF 对 OGD/R 损伤的 PC12 细胞内活性氧的影响 | 第46页 |
| ·PGSF 对 OGD/R 损伤的 PC12 细胞凋亡相关蛋白表达的影响 | 第46-47页 |
| ·小结 | 第47-48页 |
| 4 瓜子金皂苷己对原代培养神经元拟缺血再灌注损伤的保护作用 | 第48-57页 |
| ·试验材料 | 第48-49页 |
| ·动物 | 第48页 |
| ·药物与试剂 | 第48页 |
| ·主要仪器设备 | 第48-49页 |
| ·试验方法 | 第49-50页 |
| ·细胞培养及分组 | 第49页 |
| ·模型制备 | 第49-50页 |
| ·细胞存活率检测 | 第50页 |
| ·细胞形态观察 | 第50页 |
| ·免疫印迹法检测凋亡相关蛋白表达 | 第50页 |
| ·统计学处理 | 第50页 |
| ·试验结果 | 第50-55页 |
| ·PGSF 对 OGD/R 损伤的原代神经细胞存活率的影响 | 第50-51页 |
| ·PGSF 对 OGD/R 损伤的原代神经细胞形态的影响 | 第51-52页 |
| ·PGSF 与 MAPKs 抑制剂联合应用对 OGD/R 损伤的原代神经元的保护作用 | 第52-53页 |
| ·PGSF 对 OGD/R 损伤的原代神经元凋亡相关蛋白表达的影响 | 第53-55页 |
| ·小结 | 第55-57页 |
| 5 瓜子金皂苷己对 LPS 刺激 BV-2 细胞的抗炎作用及其作用机制的研究 | 第57-73页 |
| ·试验材料 | 第57-58页 |
| ·细胞株 | 第57页 |
| ·药物与试剂 | 第57-58页 |
| ·主要仪器设备 | 第58页 |
| ·试验方法 | 第58-62页 |
| ·细胞培养及分组 | 第58页 |
| ·造模方法 | 第58页 |
| ·细胞存活率/活力检测 | 第58-59页 |
| ·TNF-α浓度测定 | 第59页 |
| ·IL-1β浓度测定 | 第59页 |
| ·NO 浓度测定 | 第59页 |
| ·LPS 刺激 BV-2 细胞条件培养基对 PC12 细胞损伤模型的建立 | 第59页 |
| ·免疫印迹法检测蛋白表达 | 第59页 |
| ·逆转录-聚合酶链式反应法检测 mRNA 水平 | 第59-62页 |
| ·统计学处理 | 第62页 |
| ·试验结果 | 第62-71页 |
| ·PGSF 对 BV-2 细胞活力的影响检测结果 | 第62页 |
| ·PGSF 对 LPS 诱导的 BV-2 细胞 TNF-α释放量的影响 | 第62-63页 |
| ·PGSF 对 LPS 诱导的 BV-2 细胞 IL-1β释放量的影响 | 第63-64页 |
| ·PGSF 对 LPS 诱导的 BV-2 细胞 NO 生成的影响 | 第64-65页 |
| ·PGSF 对 LPS 刺激 BV-2 细胞条件培养基培养的 PC12 细胞存活率的影响51 | 第65页 |
| ·PGSF 对 LPS 刺激的 BV-2 细胞 iNOS 和 COX-2 蛋白表达的影响 | 第65-67页 |
| ·PGSF 对 LPS 刺激的 BV-2 细胞 iNOS mRNA 和 COX-2 mRNA 表达的影响 | 第67-68页 |
| ·PGSF 对 LPS 刺激的 BV-2 细胞 TNF-α和 IL-1β mRNA 表达的影响 | 第68-70页 |
| ·PGSF 对 LPS 刺激的 BV-2 细胞 TLR4 mRNA 表达的影响 | 第70-71页 |
| ·小结 | 第71-73页 |
| 6 全文讨论 | 第73-82页 |
| ·瓜子金皂苷己对 PC12 细胞生物及化学损伤的保护作用及抗神经炎症作用的初步观察 | 第73-75页 |
| ·瓜子金皂苷己对 PC12 细胞和原代培养神经元拟缺血再灌注损伤的保护作用 | 第75-79页 |
| ·瓜子金皂苷己对 LPS 刺激 BV-2 小胶质细胞的抗炎作用及其作用机制的研究 | 第79-82页 |
| 7 全文结论 | 第82-84页 |
| 8 创新点 | 第84-85页 |
| 致谢 | 第85-86页 |
| 参考文献 | 第86-102页 |
| 附录 | 第102-105页 |
| 作者简介 | 第105页 |
