| 致谢 | 第1-9页 |
| 摘要 | 第9-10页 |
| 缩略词表 | 第10-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-22页 |
| 1 低温影响植物开花的分子机理 | 第12-14页 |
| ·植物开花的分子机理 | 第12-13页 |
| ·低温影响植物开花的分子机理 | 第13-14页 |
| 2 植物中抗坏血酸含量的调控及其对开花时间的影响 | 第14-18页 |
| ·抗坏血酸的合成和降解 | 第14页 |
| ·抗坏血酸氧化酶和脱氢抗坏血酸还原酶 | 第14-16页 |
| ·抗坏血酸氧化酶 | 第14-16页 |
| ·脱氢抗坏血酸还原酶 | 第16页 |
| ·抗坏血酸的生理作用及其对开花时间的影响 | 第16-17页 |
| ·脱氢抗坏血酸的生理作用 | 第17-18页 |
| 3 蔗糖与植物开花之间的关系 | 第18-19页 |
| ·蔗糖的合成、转运及转化 | 第18页 |
| ·蔗糖的生理作用及其对开花时间的影响 | 第18-19页 |
| 4 过氧化氢信号途径 | 第19页 |
| 5 谷胱甘肽的作用 | 第19-20页 |
| ·谷胱甘肽的基本生理作用 | 第19-20页 |
| ·谷胱甘肽在植物开花过程中的作用 | 第20页 |
| 6. 引言 | 第20-22页 |
| ·研究目的与意义 | 第20-21页 |
| ·研究思路及内容 | 第21-22页 |
| ·研究思路及内容 | 第21页 |
| ·技术路线 | 第21-22页 |
| 第二章 低温诱导烟草早花过程中关键信号分子的鉴别 | 第22-33页 |
| 1 材料和方法 | 第22-24页 |
| ·实验材料 | 第22页 |
| ·处理方法 | 第22页 |
| ·检测方法 | 第22-24页 |
| ·质外体汁液的提取方法 | 第22页 |
| ·蔗糖含量的检测 | 第22页 |
| ·抗坏血酸和脱氢抗坏血酸含量的检测 | 第22-23页 |
| ·酶活性检测 | 第23页 |
| ·基因表达检测 | 第23-24页 |
| ·叶片中淀粉的组织化学染色 | 第24页 |
| ·H_2O_2含量的检测 | 第24页 |
| ·数据分析 | 第24页 |
| 2. 结果与分析 | 第24-30页 |
| ·低温对烟草开花的影响 | 第24-25页 |
| ·低温对蔗糖的含量、合成及转运的影响 | 第25-27页 |
| ·低温对蔗糖含量的影响 | 第25-26页 |
| ·低温对烟草中蔗糖磷酸合成酶和转化酶酶活性的影响 | 第26-27页 |
| ·低温对淀粉酶活性和淀粉含量的影响 | 第27页 |
| ·低温对抗坏血酸的含量、转化的影响 | 第27-29页 |
| ·低温对烟草不同组织中抗坏血酸及脱氢抗坏血酸含量的影响 | 第27-28页 |
| ·低温对基因表达的影响 | 第28页 |
| ·低温对H_2O_2含量及抗氧化酶活性的影响 | 第28-29页 |
| ·低温诱导烟草开花过程中关键信号分子的筛选 | 第29-30页 |
| ·长期低温对抗坏血酸氧化酶的影响 | 第30页 |
| 3. 讨论 | 第30-33页 |
| ·低温促进蔗糖从叶片向茎顶端分生组织的转运 | 第30-31页 |
| ·低温促进AsA和DHA在茎顶端分生组织的积累 | 第31页 |
| ·蔗糖、AsA和DHA在低温诱导烟草成花过程中的作用 | 第31-33页 |
| 第三章 NtSOC1正/反义转基因烟草的获得及分析 | 第33-40页 |
| 1. 材料和方法 | 第33-35页 |
| ·实验材料 | 第33页 |
| ·实验方法 | 第33-35页 |
| ·NtSOC1的克隆及载体构建 | 第33页 |
| ·质粒的提取、酶切、连接及片段回收 | 第33页 |
| ·感受态的制备及转化 | 第33-34页 |
| ·农杆菌介导的转基因烟草的获得 | 第34页 |
| ·蔗糖含量的检测 | 第34页 |
| ·抗坏血酸含量的检测 | 第34页 |
| ·DNA的提取 | 第34-35页 |
| ·半定量RT-PCR | 第35页 |
| ·数据分析 | 第35页 |
| 2 结果与分析 | 第35-39页 |
| ·烟草中SOC1(NtSOC1)基因的克隆及测序 | 第35-36页 |
| ·真核表达载体的构建并转入农杆菌 | 第36-37页 |
| ·农杆菌介导的转基因烟草的获得及鉴定 | 第37-38页 |
| ·叶片中的抗坏血酸含量 | 第38页 |
| ·叶片中的蔗糖含量 | 第38-39页 |
| 3 讨论 | 第39-40页 |
| 第四章 脱氢抗坏血酸在低温诱导烟草成花过程中的作用及其信号途径分析 | 第40-47页 |
| 1. 材料和方法 | 第40-41页 |
| ·实验材料 | 第40页 |
| ·试剂 | 第40页 |
| ·实验方法 | 第40-41页 |
| ·气孔开度分析 | 第40页 |
| ·H_2O_2的组织化学检测 | 第40页 |
| ·顶端分生组织的处理 | 第40页 |
| ·基因表达分析 | 第40页 |
| ·数据分析 | 第40-41页 |
| 2. 结果与分析 | 第41-46页 |
| ·脱氢抗坏血酸信号途径的分析 | 第41-43页 |
| ·DHA诱导H_2O_2产生的原因 | 第43-45页 |
| ·DPI和CAT对黑暗诱导的气孔关闭的影响 | 第43页 |
| ·DPI和CAT对DHA诱导的气孔关闭的影响 | 第43-44页 |
| ·DPI和CAT对DHA诱导产生的H_2O_2含量的影响 | 第44-45页 |
| ·脱氢抗坏血酸信号途径对低温诱导烟草开花的影响 | 第45页 |
| ·硼酸对烟草SAM中DHA诱导的基因表达水平的影响 | 第45-46页 |
| 3. 讨论 | 第46-47页 |
| 第五章 DHA信号途径的其他生理作用 | 第47-51页 |
| 1. 材料和方法 | 第47-48页 |
| ·实验材料 | 第47页 |
| ·实验方法 | 第47-48页 |
| ·根萌发实验 | 第47页 |
| ·RNA的提取及反转录 | 第47页 |
| ·基因表达分析 | 第47页 |
| ·酶活性分析 | 第47页 |
| ·数据分析 | 第47-48页 |
| 2 结果和分析 | 第48-50页 |
| ·DHA及其信号途径对根生长的影响 | 第48-49页 |
| ·DHA处理后根尖组织中酶活性及基因表达水平的变化 | 第49-50页 |
| 3. 讨论 | 第50-51页 |
| 第六章 结论 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-59页 |
| 英文摘要 | 第59-60页 |
