| 摘要 | 第1-8页 |
| Abstract | 第8-9页 |
| 第一章 文献综述 | 第9-20页 |
| 前言 | 第9页 |
| 1 芦荟的主要活性成分 | 第9-11页 |
| ·黄酮类化合物 | 第9页 |
| ·蒽醌类化合物 | 第9-10页 |
| ·糖类化合物 | 第10页 |
| ·氨基酸、多肽和蛋白质类化合物 | 第10页 |
| ·维生素和矿物质 | 第10-11页 |
| ·有机酸及其他成分 | 第11页 |
| 2 芦荟的主要功能活性 | 第11-13页 |
| ·抗氧化活性 | 第11页 |
| ·抗心血管疾病功能 | 第11-12页 |
| ·抗肿瘤活性 | 第12页 |
| ·抗菌消炎功能 | 第12页 |
| ·防辐射功能 | 第12-13页 |
| ·其他功能 | 第13页 |
| 3 植物黄酮生物活性的研究进展 | 第13-15页 |
| ·植物黄酮的降血脂作用 | 第13页 |
| ·植物黄酮的抗氧化活性 | 第13-14页 |
| ·植物黄酮的抗肿瘤活性 | 第14页 |
| ·植物黄酮的抑菌活性 | 第14页 |
| ·植物黄酮的抗抑郁活性 | 第14-15页 |
| ·植物黄酮的其他生物活性 | 第15页 |
| 4 脂质代谢相关候选基因的研究进展 | 第15-17页 |
| ·激素敏感脂肪酶(HSL) | 第15页 |
| ·脂肪酸合成酶(FAS) | 第15-16页 |
| ·脂肪甘油三酯脂肪酶(ATGL) | 第16页 |
| ·过氧化物酶体增殖物激活受体γ(PPARγ) | 第16-17页 |
| ·过氧化氢酶(CAT) | 第17页 |
| 5 本论文研究的目的、意义及研究现状 | 第17-20页 |
| ·研究目的及意义 | 第17-18页 |
| ·国内外研究现状 | 第18-20页 |
| 第二章 芦荟黄酮降血脂及抗氧化作用的研究 | 第20-28页 |
| 1 试验材料与仪器 | 第20页 |
| ·试验材料 | 第20页 |
| ·试验试剂 | 第20页 |
| ·试验仪器 | 第20页 |
| 2 试验方法 | 第20-21页 |
| ·高脂血症小鼠模型的建立与分组 | 第20-21页 |
| ·降脂实验 | 第21页 |
| ·生化指标测定 | 第21页 |
| ·数据统计 | 第21页 |
| 3 结果与分析 | 第21-25页 |
| ·芦荟黄酮对高脂血症小鼠肝脏组织中各项指标的影响 | 第21-23页 |
| ·芦荟黄酮对高脂血症小鼠脂肪组织中各项指标的影响 | 第23-25页 |
| 4 讨论 | 第25-27页 |
| ·芦荟黄酮的降血脂作用 | 第25-26页 |
| ·芦荟黄酮的抗氧化作用 | 第26-27页 |
| 5 小结 | 第27-28页 |
| 第三章 芦荟黄酮对高脂血症小鼠各组织基因表达的影响 | 第28-53页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第28-29页 |
| ·实验动物组织 | 第28页 |
| ·主要试剂 | 第28页 |
| ·主要仪器 | 第28-29页 |
| 2 实验方法 | 第29-31页 |
| ·小鼠各组织总RNA的提取 | 第29页 |
| ·逆转录-聚合酶链反应(RT-PCR) | 第29-31页 |
| ·电泳及统计分析 | 第31页 |
| 3 结果 | 第31-50页 |
| ·小鼠各组总RNA的提取结果 | 第31-32页 |
| ·芦荟黄酮对高脂血症小鼠各组织中HSL mRNA表达的影响 | 第32-35页 |
| ·芦荟黄酮对高脂血症小鼠各组织中PPAR γ mRNA表达的影响 | 第35-39页 |
| ·芦荟黄酮对高脂血症小鼠各组织中ATGL mRNA表达的影响 | 第39-42页 |
| ·芦荟黄酮对高脂血症小鼠各组织中FAS mRNA表达的影响 | 第42-46页 |
| ·芦荟黄酮对高脂血症小鼠各组织中CAT mRNA表达的影响 | 第46-50页 |
| 4 讨论 | 第50-51页 |
| ·芦荟黄酮对高脂血症小鼠各组织HSL mRNA表达的影响 | 第50页 |
| ·芦荟黄酮对高脂血症小鼠各组织PPAR γ mRNA表达的影响 | 第50页 |
| ·芦荟黄酮对高脂血症小鼠各组织ATGL mRNA表达的影响 | 第50-51页 |
| ·芦荟黄酮对高脂血症小鼠各组织FAS mRNA表达的影响 | 第51页 |
| ·芦荟黄酮对高脂血症小鼠各组织CAT mRNA表达的影响 | 第51页 |
| 5 小结 | 第51-53页 |
| 第四章 芦荟黄酮对高脂血症小鼠相关基因蛋白质表达的影响 | 第53-62页 |
| 1 材料与方法 | 第53-54页 |
| ·材料 | 第53-54页 |
| 2 实验方法 | 第54-56页 |
| ·常规试剂的配制 | 第54页 |
| ·蛋白的提取 | 第54页 |
| ·电泳(SDS-PAGE) | 第54-55页 |
| ·转膜 | 第55页 |
| ·封闭及杂交 | 第55页 |
| ·显色反应 | 第55页 |
| ·图像分析与统计 | 第55-56页 |
| 3 结果与分析 | 第56-60页 |
| ·芦荟黄酮对高脂血症小鼠各组织FAS蛋白表达的影响 | 第56-57页 |
| ·芦荟黄酮对高脂血症小鼠各组织ATGL蛋白表达的影响 | 第57-58页 |
| ·芦荟黄酮对高脂血症小鼠各组织PPARγ蛋白表达的影响 | 第58-60页 |
| 4 讨论 | 第60页 |
| 5 小结 | 第60-62页 |
| 第五章 HSL、FAS、SOD、GSH-PX基因多态性与小鼠诱导性高脂血症敏感性的相关性分析 | 第62-75页 |
| 1 实验材料与仪器 | 第62页 |
| ·实验动物组织 | 第62页 |
| ·主要试剂 | 第62页 |
| ·主要仪器 | 第62页 |
| 2 实验方法 | 第62-66页 |
| ·常规试剂的配制 | 第62-63页 |
| ·基因组DNA的提取(DNA extraction from tissue) | 第63-64页 |
| ·HSL、FAS、SOD、GSH-Px基因PCR-RFLP多态性检测 | 第64-65页 |
| ·数据统计分析 | 第65-66页 |
| 3 结果 | 第66-71页 |
| ·基因组DNA的提取 | 第66页 |
| ·PCR-RFLP分析结果 | 第66-71页 |
| 4 讨论 | 第71-74页 |
| ·HSL基因多态性检测结果讨论 | 第72-73页 |
| ·FAS基因多态性检测结果讨论 | 第73-74页 |
| 5 小结 | 第74-75页 |
| 结论 | 第75-77页 |
| 参考文献 | 第77-83页 |
| 致谢 | 第83-84页 |
| 个人简介 | 第84页 |
| 发表论文 | 第84页 |
| 主要参与科研课题情况 | 第84页 |
