| 摘要 | 第1-4页 |
| Abstract | 第4-9页 |
| 第一章 绪论 | 第9-23页 |
| ·根际促生菌 | 第9-12页 |
| ·概念 | 第9页 |
| ·作用机理 | 第9-11页 |
| ·研究进展和应用 | 第11-12页 |
| ·生物固氮 | 第12-17页 |
| ·概念 | 第12页 |
| ·类型 | 第12-14页 |
| ·生物固氮的特点 | 第14页 |
| ·机理 | 第14-15页 |
| ·研究进展 | 第15-16页 |
| ·应用 | 第16-17页 |
| ·氢肥理论 | 第17页 |
| ·氢氧化细菌 | 第17-22页 |
| ·氢氧化细菌的定义 | 第17页 |
| ·氢氧化细菌的基本特征 | 第17-18页 |
| ·氢氧化细菌的分类 | 第18页 |
| ·氢氧化细菌的促生机制 | 第18-19页 |
| ·氢氧化细菌的分离培养 | 第19-21页 |
| ·含有氢化酶菌株的筛选 | 第21页 |
| ·氢氧化细菌的研究现状 | 第21-22页 |
| ·研究目的、内容和意义 | 第22-23页 |
| ·研究目的 | 第22页 |
| ·研究内容 | 第22页 |
| ·研究意义 | 第22-23页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第23-35页 |
| ·实验材料 | 第23-24页 |
| ·样品 | 第23页 |
| ·培养基 | 第23页 |
| ·试剂 | 第23-24页 |
| ·仪器 | 第24页 |
| ·土壤样品的采集 | 第24页 |
| ·H_2对土壤样品性质的影响 | 第24-28页 |
| ·土壤样品的富集培养 | 第25页 |
| ·土壤样品自然含水量的测定 | 第25页 |
| ·土壤样品pH值的测定 | 第25页 |
| ·土壤样品酶活性的测定 | 第25-28页 |
| ·土壤样品有机质的测定 | 第28页 |
| ·土壤样品Ⅱ富集后H_2含量的变化 | 第28页 |
| ·氢氧化细菌的分离纯化及生理生化特性 | 第28-32页 |
| ·氧化氢能力测定 | 第29页 |
| ·自养生长检测 | 第29-30页 |
| ·氢氧化细菌的形态特征鉴定 | 第30页 |
| ·生理生化的测定 | 第30-32页 |
| ·菌株LD6最适培养条件的测定 | 第32页 |
| ·对小麦具有促生作用的氢氧化细菌的筛选 #24本实验采用平板检测方法 | 第32-33页 |
| ·检测具有ACC脱氨酶的氢氧化细菌 | 第33-35页 |
| ·筛选具有ACC脱氨酶的氢氧化细菌 | 第33页 |
| ·ACC脱氨酶酶活力测定 | 第33-34页 |
| ·分析菌株LD616SrDNA序列 | 第34-35页 |
| 第三章 结果与分析 | 第35-55页 |
| ·H_2对土壤样品性质的影响 | 第35-40页 |
| ·土壤样品自然含水量和pH的测定结果 | 第35页 |
| ·土壤样品酶活性的测定结果 | 第35-39页 |
| ·土壤样品有机质的测定结果 | 第39-40页 |
| ·土壤样品Ⅱ富集后H_2含量的变化 | 第40-41页 |
| ·氢氧化细菌的分离纯化结果 | 第41-43页 |
| ·氧化氢能力测定结果 | 第41-42页 |
| ·自养生长检测结果 | 第42-43页 |
| ·氢氧化细菌的生理生化特性 | 第43-48页 |
| ·形态特征和革兰氏染色 | 第43-46页 |
| ·生理生化特性 | 第46-48页 |
| ·菌株LD6最适培养条件 | 第48-50页 |
| ·最适碳源 | 第48-49页 |
| ·最适温度 | 第49-50页 |
| ·最适pH | 第50页 |
| ·对小麦具有促生作用的菌株筛选 | 第50-51页 |
| ·具有ACC脱氨酶的氢氧化细菌的筛选 | 第51-55页 |
| ·筛选ACC脱氨酶阳性菌株 | 第51-52页 |
| ·ACC脱氨酶酶活力测定 | 第52页 |
| ·菌株LD616SrDNA序列测定和系统发育树的构建 | 第52-55页 |
| 第四章 小结与讨论 | 第55-57页 |
| ·气体循环装置 | 第55页 |
| ·土壤性质检测 | 第55页 |
| ·氢氧化细菌的分离纯化 | 第55页 |
| ·生理生化特性及菌株鉴定 | 第55-56页 |
| ·氢氧化细菌对小麦的促生作用 | 第56页 |
| ·筛选ACC脱氨酶的阳性菌株 | 第56-57页 |
| 第五章 不足和展望 | 第57-58页 |
| 参考文献 | 第58-63页 |
| 致谢 | 第63页 |