摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-14页 |
前言 | 第14-23页 |
1 糖尿病概述 | 第14-17页 |
·I 型糖尿病的发生机制 | 第14-15页 |
·II 型糖尿病的发生机制 | 第15-17页 |
·胰岛素抵抗 | 第15-16页 |
·肥胖 | 第16-17页 |
2 肿瘤的发生和转移 | 第17-19页 |
·肿瘤的发生 | 第17-18页 |
·肿瘤侵袭和转移 | 第18页 |
·血管新生作用 | 第18-19页 |
·血管新生的基本过程 | 第19页 |
·VEGF 及其受体 | 第19页 |
3 海参多糖的研究进展 | 第19-21页 |
·海参硫酸软骨素研究进展 | 第19-20页 |
·海参硫酸软骨素的结构 | 第19-20页 |
·海参硫酸软骨素的生理活性 | 第20页 |
·海参岩藻聚糖硫酸酯研究进展 | 第20-21页 |
4 立题依据,研究目的和意义 | 第21-23页 |
第一章 海参岩藻聚糖硫酸酯降血糖作用研究 | 第23-33页 |
第一节 SC-FUC 对糖尿病小鼠血糖和胰岛素含量的影响 | 第23-30页 |
1 材料和方法 | 第23-26页 |
·实验材料 | 第23-24页 |
·海参 | 第23-24页 |
·实验动物 | 第24页 |
·试剂 | 第24页 |
·仪器 | 第24页 |
·实验方法 | 第24-26页 |
·SC-FUC 的制备 | 第24页 |
·饲料配制 | 第24-25页 |
·动物分组和实验 | 第25页 |
·空腹血糖的测定 | 第25页 |
·葡萄糖耐量的测定 | 第25页 |
·血清胰岛素测定 | 第25-26页 |
·统计学分析 | 第26页 |
2 结果与讨论 | 第26-29页 |
·对小鼠摄食量的影响 | 第26页 |
·对小鼠体重增加量的影响 | 第26-27页 |
·对小鼠脂肪组织重量的影响 | 第27页 |
·对空腹血糖的影响 | 第27-28页 |
·对葡萄糖耐量的影响 | 第28页 |
·对血清胰岛素含量的影响 | 第28-29页 |
3 小结 | 第29-30页 |
第二节 SC-FUC 对糖尿病小鼠血脂和肝脂的影响 | 第30-33页 |
1 材料和方法 | 第30页 |
·实验材料 | 第30页 |
·试剂 | 第30页 |
·仪器 | 第30页 |
·实验方法 | 第30页 |
·动物分组和实验 | 第30页 |
·血清脂质浓度测定 | 第30页 |
·肝脏脂质浓度测定 | 第30页 |
·统计学分析 | 第30页 |
2 结果和讨论 | 第30-32页 |
·对小鼠血清脂质含量的影响 | 第31页 |
·对小鼠肝脏脂质含量的影响 | 第31-32页 |
3 小结 | 第32-33页 |
第二章 海参岩藻聚糖硫酸酯降血糖作用机制研究 | 第33-51页 |
第一节 SC-FUC 对糖尿病小鼠血清脂联素、瘦素、TNF-α的影响 | 第33-36页 |
1 材料与方法 | 第33-34页 |
·实验材料 | 第33页 |
·试剂 | 第33-34页 |
·仪器 | 第34页 |
·实验方法 | 第34页 |
·饲料配制及动物实验 | 第34页 |
·血清脂联素测定 | 第34页 |
·血清 TNF-α测定 | 第34页 |
·血清瘦素测定 | 第34页 |
·统计学分析 | 第34页 |
2 结果 | 第34-35页 |
·对血清脂联素的影响 | 第34-35页 |
·对血清 TNF-α的影响 | 第35页 |
·对血清瘦素的影响 | 第35页 |
3 小结 | 第35-36页 |
第二节 SC-FUC 调节糖尿病小鼠糖原合成机制的研究 | 第36-43页 |
1 材料和方法 | 第36-38页 |
·实验材料 | 第36页 |
·试剂 | 第36页 |
·仪器 | 第36-37页 |
·实验方法 | 第37-38页 |
·动物分组和实验 | 第37页 |
·肝糖元和肌糖元测定 | 第37页 |
·RT-PCR 法检测肝脏和肌肉组织中 IR、IRS、PI3K、AKT2、GSK3β mRNA 的表达 | 第37-38页 |
·统计学分析 | 第38页 |
2 结果 | 第38-43页 |
·对肝糖元含量的影响 | 第38-39页 |
·对肌糖元含量的影响 | 第39页 |
·对肝脏组织中 IR、IRS2、PI3K 和 AKT2 mRNA 表达的影响 | 第39-40页 |
·对肌肉组织中 IR、IRS1、PI3K 和 AKT2 mRNA 表达的影响 | 第40-42页 |
·对肝脏和肌肉组织中 GSK3β mRNA 表达的影响 | 第42-43页 |
3 小结 | 第43页 |
第三节 SC-FUC 调节二型糖尿病小鼠葡萄糖转运的机制研究 | 第43-51页 |
1 材料与方法 | 第43-44页 |
·实验材料、试剂和仪器 | 第43页 |
·实验方法 | 第43-44页 |
·动物分组和实验 | 第43页 |
·RT-PCR 法检测肌肉和脂肪组织中 IR、IRS-1、PI3K、AKT2、GULT4 mRNA 的表达 | 第43-44页 |
·统计学分析 | 第44页 |
2 结果 | 第44-48页 |
·对肌肉组织中 IR、IRS-1、PI3K、AKT2 和 GLUT4 mRNA 表达的影响 | 第44-46页 |
·对脂肪组织中 IR、IRS-1、PI3K、AKT2 和 GLUT4 mRNA 表达的影响 | 第46-48页 |
3 小结 | 第48页 |
4 本章讨论 | 第48-51页 |
第三章 海参岩藻聚糖硫酸酯抑制肿瘤生长和转移作用及其机制研究 | 第51-69页 |
第一节 SC-FUC 抑制 Lewis 肺癌荷瘤小鼠肿瘤生长和转移作用的研究 | 第51-55页 |
1 材料与方法 | 第51-53页 |
·实验材料 | 第51-52页 |
·SC-FUC | 第52页 |
·实验动物 | 第52页 |
·小鼠 Lewis 肺癌细胞株 | 第52页 |
·药品和试剂 | 第52页 |
·主要仪器 | 第52页 |
·实验方法 | 第52-53页 |
·Lewis 肺癌细胞在小鼠体内传代 | 第52页 |
·动物模型的复制和实验 | 第52页 |
·肿瘤生长曲线的测定 | 第52-53页 |
·抑瘤率的测定 | 第53页 |
·Lewis 肺癌自发肺转移抑制率 | 第53页 |
·数据分析 | 第53页 |
2 结果 | 第53-55页 |
·对肿瘤生长曲线的影响 | 第53页 |
·对荷瘤小鼠抑瘤率的影响 | 第53-54页 |
·对荷瘤小鼠肿瘤转移的影响 | 第54-55页 |
4 小结 | 第55页 |
第二节 SC-FUC 抑制 Lewis 自发肺转移模型小鼠肿瘤转移作用机制的研究 | 第55-62页 |
1 材料与方法 | 第55-57页 |
·实验材料 | 第55-56页 |
·材料 | 第55-56页 |
·药品和试剂 | 第56页 |
·主要仪器 | 第56页 |
·实验方法 | 第56-57页 |
·动物模型的建立和实验 | 第56页 |
·RT-PCR 法检测肿瘤组织中 HIF-1α、bFGF、VEGF、Hpa、MMP-2/9 和 TIMP-1/2 mRNA 的表达 | 第56-57页 |
2 结果 | 第57-60页 |
·对肿瘤组织中 HIF-1α、b-FGF 和 VEGF mRNA 表达的影响 | 第57-58页 |
·对肿瘤组织中 HPA mRNA 表达的影响 | 第58-59页 |
·对肿瘤组织中 MMP-2/9 和 TIMP-1/2 mRNA 表达的影响 | 第59-60页 |
3 讨论 | 第60-61页 |
4 小结 | 第61-62页 |
第三节 SC-FUC 抑制小鼠 B16 黑色素瘤实验性肺转移作用的研究 | 第62-69页 |
1 材料和方法 | 第62-63页 |
·材料 | 第62页 |
·材料 | 第62页 |
·细胞株 | 第62页 |
·药品和试剂 | 第62页 |
·主要仪器 | 第62页 |
·实验方法 | 第62-63页 |
·动物模型建立 | 第62-63页 |
·对小鼠肺转移灶的影响 | 第63页 |
·血清唾液酸含量和γ-谷胺酰转肽酶活力的测定 | 第63页 |
·肺脏羟脯氨酸含量的测定 | 第63页 |
·肺脏氨基己糖含量的测定 | 第63页 |
·肺脏糖醛酸含量的测定 | 第63页 |
·数据分析 | 第63页 |
2 结果 | 第63-66页 |
·对 B16-F10 细胞肺转移的影响 | 第63-64页 |
·对血清中唾液酸含量和γ -谷胺酰转氨酶活力的影响 | 第64-65页 |
·对肺组织中羟脯氨酸含量的影响 | 第65-66页 |
·对肺组织中氨基己糖和糖醛酸含量的影响 | 第66页 |
3 讨论 | 第66-68页 |
4 小结 | 第68-69页 |
结论 | 第69-70页 |
本论文的特色及创新之处 | 第70-71页 |
参考文献 | 第71-78页 |
致谢 | 第78-79页 |
个人简历 | 第79-80页 |
发表学术论文 | 第80页 |