摘要 | 第1-8页 |
ABSTRACT | 第8-10页 |
上篇 文献综述 | 第10-33页 |
第一章 植物病害生物防治研究进展 | 第11-19页 |
1. 生防制剂 | 第11-16页 |
·微生物杀菌剂 | 第11-13页 |
·农用抗生素 | 第13页 |
·植物源杀菌剂 | 第13-14页 |
·遗传工程菌 | 第14-15页 |
·转基因植物 | 第15页 |
·其它 | 第15-16页 |
2. 生防机制 | 第16-19页 |
·直接作用 | 第16-18页 |
·诱导系统抗性(SAR) | 第18-19页 |
第二章 荧光假单胞菌与生物防治 | 第19-25页 |
1、荧光假单胞菌的主要种群 | 第19页 |
2、荧光假单胞菌的生防作用 | 第19-20页 |
3、荧光假单胞菌的生防机制 | 第20-25页 |
第三章 细菌鞭毛研究概况及进展 | 第25-31页 |
1、基本特性 | 第25-26页 |
·化学组成 | 第25页 |
·形态结构 | 第25-26页 |
2、染色方法研究 | 第26-27页 |
3、分子生物学研究 | 第27-29页 |
·部分细菌的鞭毛编码基因 | 第27-28页 |
·鞭毛蛋白中央区的可变性 | 第28-29页 |
4、已发现的功能 | 第29-31页 |
·与运动相关 | 第29页 |
·与毒力相关 | 第29页 |
·与抗原性相关 | 第29-31页 |
第四章 假单胞菌鞭毛功能研究进展 | 第31-33页 |
下篇 研究内容 | 第33-71页 |
第一章 荧光假单胞pf7-14鞭毛蛋白合成基因flhA的克隆与序列分析 | 第35-55页 |
1 材料与方法 | 第38-46页 |
·试验所涉及的菌株、质粒 | 第38页 |
·培养基及抗生素 | 第38-39页 |
·培养基 | 第38页 |
·菌株培养条件及保存 | 第38-39页 |
·细菌基因组DNA的提取 | 第39-40页 |
·质粒的提取 | 第40-41页 |
·DNA凝胶电泳及DNA片段浓度、大小测算 | 第41页 |
·DNA酶切、连接和PCR扩增产物回收 | 第41-42页 |
·质粒的转化 | 第42页 |
·Southern杂交 | 第42-45页 |
·PCR反应 | 第45-46页 |
·序列分析 | 第46页 |
2 结果与分析 | 第46-54页 |
·荧光假单胞菌pf7-14中flhA基因的克隆、测序 | 第46-48页 |
·荧光假单胞菌pf7-14中flhA_(pf7-14)基因的序列分析 | 第48-53页 |
·flhA_(pf7-14)在基因组中的拷贝数分析 | 第53-54页 |
3、讨论 | 第54-55页 |
第二章 荧光假单胞Pf7-14flhA基因的突变、互补及功能分析 | 第55-71页 |
1 材料与方法 | 第57-61页 |
·试验所涉及的菌株、质粒及培养条件 | 第57页 |
·培养基、抗生素及培养条件 | 第57页 |
·细菌基因组DNA的提取 | 第57页 |
·质粒的提取 | 第57页 |
·DNA酶切、连接、PCR扩增产物回收及质粒转化 | 第57页 |
·Southern杂交 | 第57页 |
·flhA整合突变株的构建 | 第57-59页 |
·flhA互补菌株的构建 | 第59-60页 |
·游动性试验 | 第60页 |
·细胞形态和鞭毛观察 | 第60页 |
·嗜铁素检测 | 第60页 |
·生物膜检测 | 第60-61页 |
·蛋白酶检测 | 第61页 |
·平板拮抗试验 | 第61页 |
·荧光假单胞菌在水稻叶片上的定殖及对水稻纹枯病的防治试验 | 第61页 |
2、结果与分析 | 第61-68页 |
·flhA整合突变株的构建及验证 | 第61-64页 |
·flhA互补菌株的构建及验证 | 第64-65页 |
·flhA突变株缺失了鞭毛装置 | 第65页 |
·flhA丧失了游动能力 | 第65-66页 |
·flhA突变不改变Pf7-14生物膜的形成、嗜铁素和蛋白酶的产生 | 第66-67页 |
·flhA突变不改变Pf7-14对水稻纹枯病菌和油菜菌核病菌的拮抗能力 | 第67页 |
·flhA突变降低了Pf7-14在水稻叶片上定殖时间 | 第67-68页 |
·flhA突变降低了Pf7-14对水稻纹枯病菌的防效 | 第68页 |
3、讨论 | 第68-71页 |
参考文献 | 第71-77页 |
致谢 | 第77页 |