| 摘要 | 第1-9页 |
| ABSTRACT | 第9-18页 |
| 中英文缩略词对照表 | 第18-19页 |
| 前言 | 第19-22页 |
| 第一章 慢性氟中毒对大鼠骨相损伤的影响 | 第22-35页 |
| ·材料和方法 | 第22-25页 |
| ·主要试剂和设备 | 第22-23页 |
| ·实验动物 | 第23页 |
| ·实验动物饲养及分组 | 第23页 |
| ·实验动物染氟及处理 | 第23-24页 |
| ·病理学检测 | 第24页 |
| ·数据收集处理 | 第24-25页 |
| ·结果 | 第25-33页 |
| ·染氟大鼠一般状况的变化 | 第25-26页 |
| ·染氟大鼠牙齿的变化 | 第26-28页 |
| ·染氟大鼠骨X线及骨密度的改变 | 第28-29页 |
| ·染氟大鼠股骨组织形态计量参数分析 | 第29-30页 |
| ·HE染色观察组织病理学改变 | 第30-32页 |
| ·染氟大鼠6个月后尿、血、骨和牙中氟离子浓度改变 | 第32-33页 |
| ·讨论 | 第33-35页 |
| 第二章 氟对离体培养破骨细胞增殖的影响 | 第35-48页 |
| ·材料和方法 | 第35-39页 |
| ·主要试剂和设备 | 第35-36页 |
| ·骨磨片的制备 | 第36页 |
| ·RAW264.7细胞爬片的制备 | 第36-37页 |
| ·RAW264.7细胞的复苏和培养 | 第37页 |
| ·sRANKL诱导后的RAW264.7细胞形态变化 | 第37页 |
| ·sRANKL诱导后RAW264.7细胞功能变化 | 第37页 |
| ·RAW264.7细胞TRAP染色 | 第37页 |
| ·MTT法描绘生长曲线及染氟剂量的筛选 | 第37-38页 |
| ·染氟RAW264.7细胞实验分组 | 第38页 |
| ·染氟RAW264.7细胞HE染色 | 第38页 |
| ·染氟RAW264.7细胞扫描电镜和透射电镜样品制备 | 第38页 |
| ·数据收集处理 | 第38-39页 |
| ·结果 | 第39-45页 |
| ·诱导前后破骨细胞形态学观察 | 第39页 |
| ·诱导前后倒置显微镜观察骨片 | 第39页 |
| ·诱导后通过HE染色和甲苯胺蓝染色后观察骨片 | 第39页 |
| ·诱导后通过扫描电镜观察RAW264.7细胞 | 第39-40页 |
| ·RAW264.7细胞的生长曲线和增殖曲线 | 第40页 |
| ·氟作用于RAW264.7细胞后扫描电镜变化 | 第40页 |
| ·氟作用于RAW264.7细胞后透射电镜变化 | 第40-41页 |
| ·氟干预后的光镜和扫描电镜显示RAW264.7细胞的增殖分化状态和过程 | 第41-45页 |
| ·讨论 | 第45-48页 |
| 第三章 氟对破骨细胞作用的可能分子机制 | 第48-66页 |
| ·材料和方法 | 第49-58页 |
| ·主要试剂和设备 | 第49-50页 |
| ·RAW264.7细胞的复苏和培养 | 第50页 |
| ·细胞爬片的制备 | 第50页 |
| ·RT-PCR检测染氟RAW264,7细胞MCM3mRNA的表达量 | 第50-52页 |
| ·Western blot检测染氟RAW264.7细胞MCM3蛋白的表达量 | 第52-56页 |
| ·免疫荧光检测染氟RAW264.7细胞中的MCM3的表达 | 第56页 |
| ·ELISA法检测染氟大鼠血清中MCM3的变化 | 第56-57页 |
| ·MCM3对RAW264.7细胞增殖活力的影响 | 第57-58页 |
| ·数据收集处理 | 第58页 |
| ·结果 | 第58-64页 |
| ·染氟RAW264.7细胞MCM3基因的mRNA的表达 | 第58-59页 |
| ·Western-blot检测染氟RAW264.7细胞MCM3蛋白表达 | 第59-60页 |
| ·免疫荧光检测染氟RAW264.7细胞中MCM3蛋白表达 | 第60-61页 |
| ·ELISA方法检测染氟大鼠血清中MCM3的变化 | 第61-62页 |
| ·MCM3对RAW264.7细胞增殖活力的影响 | 第62-64页 |
| ·讨论 | 第64-66页 |
| 结论 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-75页 |
| 综述 | 第75-92页 |
| 参考文献 | 第83-92页 |
| 致谢 | 第92-93页 |
| 攻读博士学位期间发表的论文及研究成果 | 第93页 |
| 攻读博士学位期间发表的相关学术论文 | 第93-94页 |
