| 中文摘要 | 第1-12页 |
| Abstract | 第12-14页 |
| 第一章 绪论 | 第14-27页 |
| ·立题背景和意义 | 第14-15页 |
| ·国内外研究进展 | 第15-20页 |
| ·桑黄的研究概况 | 第15-17页 |
| ·国内外桑黄的主要种名和地区分布 | 第15页 |
| ·桑黄的人工栽培 | 第15-16页 |
| ·桑黄的药理作用 | 第16-17页 |
| ·桑黄的主要化学成分及桑黄多糖理化性质和化学结构的研究现状 | 第17-18页 |
| ·桑黄的主要化学成分 | 第17-18页 |
| ·桑黄多糖理化性质和化学结构的研究现状 | 第18页 |
| ·食药用真菌多糖结构与活性关系的研究进展 | 第18-20页 |
| ·研究目的和内容 | 第20-27页 |
| ·研究的目的 | 第20页 |
| ·主要研究内容 | 第20-27页 |
| 第二章 桑黄子实体多糖的分离纯化和理化性质的研究 | 第27-45页 |
| ·引言 | 第27页 |
| ·实验材料与方法 | 第27-32页 |
| ·主要材料 | 第27页 |
| ·桑黄子实体粗多糖的提取分离 | 第27-29页 |
| ·水提醇沉法分离桑黄子实体粗多糖 | 第27-28页 |
| ·水提超滤法分离桑黄子实体粗多糖 | 第28-29页 |
| ·桑黄子实体粗多糖含量的测定 | 第29-30页 |
| ·桑黄的还原糖的测定 | 第29-30页 |
| ·总糖的测定 | 第30页 |
| ·桑黄粗多糖中蛋白质的测定 | 第30页 |
| ·桑黄粗多糖的分离纯化 | 第30-31页 |
| ·粗多糖的阴离子交换柱层析 | 第30-31页 |
| ·多糖的凝胶柱层析 | 第31页 |
| ·多糖的纯度鉴定 | 第31页 |
| ·多糖的分子量的测定 | 第31-32页 |
| ·多糖紫外光谱（UV）的检测 | 第32页 |
| ·多糖红外光谱（IR）分析 | 第32页 |
| ·结果与分析 | 第32-41页 |
| ·桑黄子实体粗多糖含量 | 第32页 |
| ·桑黄子实体粗多糖的提取分离 | 第32-34页 |
| ·水提醇沉法分离得到的桑黄子实体粗多糖 | 第32-33页 |
| ·水提超滤法分离得到的桑黄子实体粗多糖 | 第33-34页 |
| ·粗多糖的分离纯化 | 第34-40页 |
| ·粗多糖的离子柱层析 | 第34-37页 |
| ·多糖的凝胶柱层析 | 第37-40页 |
| ·多糖纯度的鉴定 | 第40页 |
| ·多糖分子量的测定 | 第40页 |
| ·多糖的紫外分析 | 第40-41页 |
| ·多糖的红外光谱分析 | 第41页 |
| ·讨论 | 第41-42页 |
| ·本章小结 | 第42页 |
| 参考文献 | 第42-45页 |
| 第三章 桑黄子实体分级分离的多糖体外免疫活性的研究 | 第45-55页 |
| ·引言 | 第45页 |
| ·实验材料和方法 | 第45-46页 |
| ·主要材料 | 第45页 |
| ·试剂 | 第45-46页 |
| ·供试样品的配制 | 第46页 |
| ·小鼠淋巴细胞的制备 | 第46页 |
| ·淋巴细胞增殖率的测定 | 第46页 |
| ·结果与分析 | 第46-52页 |
| ·水提醇沉各部分粗多糖的体外免疫活性 | 第46-47页 |
| ·水提超滤各部分粗多糖的体外免疫活性 | 第47-48页 |
| ·PIP30 离子色谱分离各组分的体外免疫活性 | 第48页 |
| ·PIP60 离子色谱分离各组分的体外免疫活性 | 第48-49页 |
| ·PIWE1-10 离子色谱分离各组分的体外免疫活性 | 第49-50页 |
| ·PIWE10-100 离子色谱分离各组分的体外免疫活性 | 第50页 |
| ·PIWE100 离子色谱分离各组分的体外免疫活性 | 第50-51页 |
| ·凝胶柱分离得到的五个均一多糖的体外免疫活性 | 第51-52页 |
| ·讨论 | 第52-53页 |
| ·本章小结 | 第53页 |
| 参考文献 | 第53-55页 |
| 第四章 桑黄子实体均一多糖的结构研究 | 第55-78页 |
| ·引言 | 第55-56页 |
| ·材料和方法 | 第56-59页 |
| ·材料 | 第56页 |
| ·试剂 | 第56页 |
| ·单糖组成和摩尔比测定 | 第56页 |
| ·甲基化试剂 | 第56页 |
| ·核磁共振试剂 | 第56页 |
| ·菌丝体培养用试剂 | 第56页 |
| ·离子色谱分析 | 第56-57页 |
| ·混合单糖标准品液和单糖标准品液的制备 | 第56页 |
| ·样品前处理 | 第56页 |
| ·离子色谱条件 | 第56-57页 |
| ·气质-联用（GC-MS）分析 | 第57页 |
| ·样品前处理 | 第57页 |
| ·GC-MS 色谱条件 | 第57页 |
| ·甲基化分析 | 第57-58页 |
| ·核磁共振分析 | 第58页 |
| ·桑黄菌丝体的发酵和菌丝体多糖的提取 | 第58-59页 |
| ·菌种培养基 | 第58页 |
| ·液体菌种培养 | 第58页 |
| ·菌丝体的收集和多糖的提取 | 第58-59页 |
| ·结果与分析 | 第59-73页 |
| ·P60w1 的结构分析 | 第59-68页 |
| ·P60w1 的单糖组成分析 | 第59-60页 |
| ·P60w1 的单糖组成中3-O-甲基-半乳糖的鉴定 | 第60-62页 |
| ·P60w1 的甲基化分析结果 | 第62-63页 |
| ·P60w1 的核磁共振分析 | 第63-68页 |
| ·P60s1 的结构初步分析 | 第68-69页 |
| ·P60s1 的单糖组成分析 | 第68页 |
| ·P60s1 的甲基化分析结果 | 第68-69页 |
| ·P1SP1 的结构初步分析 | 第69-70页 |
| ·P1SP1 的单糖组成分析 | 第69页 |
| ·P1SP1 的甲基化分析结果 | 第69-70页 |
| ·P10SP1 的结构初步分析 | 第70-71页 |
| ·单糖组成分析 | 第70-71页 |
| ·P10SP1 的甲基化分析结果 | 第71页 |
| ·核磁共振分析 | 第71页 |
| ·P100SP1 的结构初步分析 | 第71-72页 |
| ·单糖组成分析 | 第71-72页 |
| ·P100SP1 的甲基化分析结果 | 第72页 |
| ·桑黄P.igniarius 多糖中3-O-甲基-半乳糖的进一步确证 | 第72-73页 |
| ·讨论 | 第73-74页 |
| ·本章小结 | 第74-75页 |
| 参考文献 | 第75-78页 |
| 第五章 桑黄子实体免疫活性多糖的抗肿瘤作用研究 | 第78-88页 |
| ·引言 | 第78页 |
| ·材料和方法 | 第78-80页 |
| ·材料 | 第78-79页 |
| ·样品 | 第78-79页 |
| ·试剂 | 第79页 |
| ·动物实验的阳性对照药物 | 第79页 |
| ·实验动物 | 第79页 |
| ·动物模型的建立 | 第79页 |
| ·肝癌H_(22) 小鼠移植性肿瘤模型的建立方法 | 第79页 |
| ·Lewis 肺癌小鼠移植性肿瘤模型的建立方法 | 第79页 |
| ·给药方式 | 第79-80页 |
| ·肝癌H22 小鼠移植性肿瘤模型的给药方式 | 第79-80页 |
| ·Lewis 肺癌小鼠移植性肿瘤模型的给药方式 | 第80页 |
| ·动物实验肿瘤抑制率计算 | 第80页 |
| ·体外抑制肿瘤细胞实验 | 第80页 |
| ·结果和分析 | 第80-85页 |
| ·桑黄醇提物和多糖对小鼠肝癌H22 的抑瘤作用 | 第80-82页 |
| ·桑黄多糖对小鼠Lewis 肺癌的抑瘤作用 | 第82-83页 |
| ·桑黄多糖体外抑制肿瘤细胞的作用 | 第83-85页 |
| ·桑黄多糖抗肿瘤机制的初步探讨 | 第85-86页 |
| ·本章小结 | 第86页 |
| 参考文献 | 第86-88页 |
| 主要结论 | 第88-90页 |
| 主要创新点 | 第90-91页 |
| 展望 | 第91-92页 |
| 附图 | 第92-108页 |
| 致谢 | 第108-109页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第109-110页 |
