摘要 | 第1-7页 |
Abstract | 第7-12页 |
1. 前言 | 第12-32页 |
·血管形成 | 第12-18页 |
·血管生成概述 | 第12-13页 |
·血管生成调控网络 | 第13-18页 |
·缺氧与缺氧诱导因子(hypoxia inducible factor, HIF) | 第18-23页 |
·缺氧与生物机能 | 第18-20页 |
·缺氧与缺氧诱导因子(HIF)的激活 | 第20-22页 |
·缺氧与血管形成 | 第22-23页 |
·IGF 系统与 IGFBP-6 | 第23-28页 |
·IGF 信号系统简介 | 第23-25页 |
·IGF 信号通路与血管形成 | 第25-28页 |
·IGFBP-6 | 第28页 |
·基于斑马鱼胚胎技术的血管形成研究 | 第28-32页 |
·斑马鱼胚胎技术 | 第28-29页 |
·斑马鱼胚胎血管形成 | 第29-32页 |
2. 材料和方法 | 第32-43页 |
·斑马鱼胚胎培养 | 第32页 |
·细胞培养及缺氧处理 | 第32页 |
·RNA 提取 | 第32-33页 |
·RT-PCR 及 Real-time PCR | 第33-36页 |
·RT-PCR | 第33-34页 |
·目的基因的 Real-time PCR 检测 | 第34-36页 |
·在斑马鱼胚胎中过表达IGFBP-6 对血管生成及胚胎生长发育的影响 | 第36-38页 |
·表达载体的构建 | 第36页 |
·mRNA 的体外合成 | 第36-38页 |
·显微注射 | 第38页 |
·裸鼠实体瘤血管形成实验(Gallicchio et al. 2001) | 第38-39页 |
·Rh30 细胞的转染 | 第38-39页 |
·异体移植实验 | 第39页 |
·显微成像与数据分析 | 第39页 |
·体外血管形成实验(Matrigel assay) | 第39-40页 |
·蛋白样品的免疫印迹分析 | 第40-42页 |
·蛋白样品的收集 | 第40-41页 |
·Western blotting | 第41-42页 |
·数据统计与分析 | 第42-43页 |
3. 实验结果 | 第43-59页 |
·缺氧上调血管内皮细胞igfbp-6 的表达 | 第43-45页 |
·缺氧对血管内皮细胞igfbp-6基因表达的调控可能是通过HIF-1a来实现的 | 第45-47页 |
·人类IGFBP-6:GFP 过表达载体的构建及验证 | 第47-49页 |
·IGFBP-6 抑制 HUVEC 细胞在体外形成血管 | 第49-50页 |
·IGFBP-6 对血管形成的抑制作用不依赖于 IGF | 第50-51页 |
·IGFBP-6 拮抗 VEGF 对血管形成的促进作用 | 第51-54页 |
·在体过表达IGFBP-6 抑制斑马鱼胚胎和裸鼠异体移植实体瘤的血管形成,且 IGFBP-6 的抑制血管生成作用具有进化保守性 | 第54-56页 |
·IGFBP-6 激活 HUVEC 细胞的Akt,p38 以及Erk1/2信号通路 | 第56-57页 |
·抑制 PI3K-Akt,MAPK-Erk1/2,MAPK-p38 信号通路未能营救IGFBP-6 造成的血管形成缺陷 | 第57-59页 |
4. 讨论 | 第59-62页 |
5. 总结 | 第62-64页 |
6. 展望 | 第64-66页 |
·缺氧上调 IGFBP-6 基因表达机制的深入阐明 | 第64页 |
·IGFBP-6 抑制体内血管生成是否依赖于IGF 配体结合力 | 第64页 |
·IGFBP-6 与 VEGF 共同作用的机制 | 第64-65页 |
·细胞内信号转导途径 | 第65-66页 |
参考文献 | 第66-77页 |
附录 | 第77-79页 |
致谢 | 第79-80页 |
个人简历 | 第80-81页 |
硕士期间发表论文 | 第81页 |