| 第一章 文献综述 | 第1-21页 |
| §1-1 引言 | 第10-15页 |
| 1-1-1 细菌群体感应系统 | 第10页 |
| 1-1-2 细菌群体感应信号分子 | 第10-13页 |
| 1-1-2-1 革兰氏阴性细菌中的群体感应信号分子 | 第10-11页 |
| 1-1-2-2 其他信号分子 | 第11页 |
| 1-1-2-3 革兰氏阳性细菌中的群体感应信号分子 | 第11-12页 |
| 1-1-2-4 常见的acyl-HSL分子及其生物学功能 | 第12-13页 |
| 1-1-3 细菌群体感应调控机制 | 第13-14页 |
| 1-1-3-1 革兰氏阴性细菌群体感应调控机制 | 第13-14页 |
| 1-1-3-2 革兰氏阳性细菌的群体感应调节机制 | 第14页 |
| 1-1-4 群体感应与植物病害 | 第14-15页 |
| 1-1-5 群体感应与抗生素耐药 | 第15页 |
| §1-2 群体感应淬灭酶 | 第15-19页 |
| 1-2-1 原核生物中的群体感应淬灭酶 | 第16页 |
| 1-2-2 真核生物中的群体感应淬灭酶 | 第16-17页 |
| 1-2-3 群体感应淬灭酶的作用机制和特性 | 第17-18页 |
| 1-2-4 AHL降解酶的生物学功能 | 第18页 |
| 1-2-5 AHL降解酶在生防及药理学上的应用 | 第18-19页 |
| §1-3 AHL信号分子的检测方法 | 第19页 |
| 1-3-1 物理学的检测手段 | 第19页 |
| 1-3-2 运用某些细菌的色素或者荧光检测信号分子 | 第19页 |
| 1-3-3 薄层层析 | 第19页 |
| §1-4 本实验的研究内容 | 第19-20页 |
| 1-4-1 含群体感应淬灭酶的菌种的筛选和纯化 | 第19-20页 |
| 1-4-2 含群体感应淬灭酶的菌种的鉴定 | 第20页 |
| 1-4-3 含群体感应淬灭酶的菌种性质研究 | 第20页 |
| 1-4-4 含群体感应淬灭酶的菌种对致病菌的拮抗研究 | 第20页 |
| §1-5 本实验的研究目的和意义 | 第20-21页 |
| 第二章 实验材料和方法 | 第21-32页 |
| §2-1 菌种和质粒 | 第21页 |
| 2-1-1 菌种 | 第21页 |
| 2-1-2 质粒 | 第21页 |
| §2-2 实验试剂 | 第21页 |
| §2-3 酶类及试剂盒 | 第21页 |
| §2-4 培养基和培养条件 | 第21-22页 |
| 2-4-1 培养基 | 第21-22页 |
| 2-4-2 培养条件 | 第22页 |
| §2-5 实验仪器 | 第22页 |
| §2-6 实验方法和步骤 | 第22-32页 |
| 2-6-1 菌种的筛选和纯化 | 第22-23页 |
| 2-6-1-1 菌种的筛选 | 第22页 |
| 2-6-1-2 菌种的纯化 | 第22页 |
| 2-6-1-3 所筛得菌株降解AHL能力的进一步验证 | 第22-23页 |
| 2-6-1-3-1 实验原理 | 第22-23页 |
| 2-6-1-3-2 实验步骤 | 第23页 |
| 2-6-2 菌种的鉴定 | 第23-29页 |
| 2-6-2-1 细菌X1的鉴定 | 第23-27页 |
| 2-6-2-1-1 形态学观察 | 第23页 |
| 2-6-2-1-2 生理生化特征 | 第23-24页 |
| 2-6-2-1-2-1 氧化酶试验 | 第23页 |
| 2-6-2-1-2-2 接触酶试验 | 第23页 |
| 2-6-2-1-2-3 运动性观察 | 第23页 |
| 2-6-2-1-2-4 V.P试验 | 第23-24页 |
| 2-6-2-1-2-5 明胶液化 | 第24页 |
| 2-6-2-1-2-6 淀粉水解 | 第24页 |
| 2-6-2-1-2-7 耐盐性 | 第24页 |
| 2-6-2-1-2-8 葡萄糖氧化发酵 | 第24页 |
| 2-6-2-1-2-9 甲基红试验 | 第24页 |
| 2-6-2-1-2-10 反硝化 | 第24页 |
| 2-6-2-1-2-11 果胶水解 | 第24页 |
| 2-6-2-1-2-12 硝酸盐还原 | 第24页 |
| 2-6-2-1-3 分子水平16SrDNA序列分析 | 第24-27页 |
| 2-6-2-1-3-1 细菌X1基因组DNA的提取 | 第24-25页 |
| 2-6-2-1-3-2 16SrDNA扩增PCR | 第25页 |
| 2-6-2-1-3-3 PCR产物的回收和T载体连接 | 第25-26页 |
| 2-6-2-1-3-4 大肠杆菌DH5α感受态细胞的制备 | 第26页 |
| 2-6-2-1-3-5 转化大肠杆菌 | 第26页 |
| 2-6-2-1-3-6 阳性克隆 | 第26页 |
| 2-6-2-1-3-7 克隆片段DNA的测序及序列分析 | 第26页 |
| 2-6-2-1-3-8 系统发育分析 | 第26-27页 |
| 2-6-2-2 酵母菌R1的鉴定 | 第27-29页 |
| 2-6-2-2-1 形态与培养特征 | 第27页 |
| 2-6-2-2-2 酵母假菌丝的观察 | 第27页 |
| 2-6-2-2-3 生理生化特征 | 第27-28页 |
| 2-6-2-2-3-1 糖发酵试验 | 第27页 |
| 2-6-2-2-3-2 碳源同化试验 | 第27页 |
| 2-6-2-2-3-3 氮源同化试验 | 第27页 |
| 2-6-2-2-3-4 无维生素生长测试 | 第27-28页 |
| 2-6-2-2-3-5 生成类淀粉化合物试验 | 第28页 |
| 2-6-2-2-4 分子水平18SrDNA序列分析 | 第28-29页 |
| 2-6-2-2-4-1 酵母菌R1基因组DNA的提取 | 第28页 |
| 2-6-2-2-4-2 18SrDNA扩增PCR | 第28-29页 |
| 2-6-2-2-4-3 PCR产物的回收、连接、转化、阳性克隆 | 第29页 |
| 2-6-2-2-4-4 系统发育分析 | 第29页 |
| 2-6-3 菌的性质研究 | 第29-30页 |
| 2-6-3-1 菌株X1和R1生长曲线测定 | 第29页 |
| 2-6-3-2 菌株X1和R1最适生长温度 | 第29页 |
| 2-6-3-3 菌株X1和R1最适生长初始pH值 | 第29页 |
| 2-6-3-4 菌株X1和R1对不同信号分子的降解 | 第29-30页 |
| 2-6-3-4-1 不同信号分子标准曲线的测定 | 第29页 |
| 2-6-3-4-2 菌株X1和R1对不同信号分子降解曲线的测定 | 第29页 |
| 2-6-3-4-3 菌株X1和R1对不同碳源的利用 | 第29-30页 |
| 2-6-3-5 降解酶的性质研究 | 第30页 |
| 2-6-3-5-1 菌株X1和R1粗酶液酶活的测定 | 第30页 |
| 2-6-3-5-1-1 粗酶液的制备 | 第30页 |
| 2-6-3-5-1-2 粗酶液酶活的测试 | 第30页 |
| 2-6-3-5-2 菌株X1和R1是否含水解酶的研究 | 第30页 |
| 2-6-3-5-2-1 菌株X1和R1基因组DNA的提取 | 第30页 |
| 2-6-3-5-2-2 水解酶基因的PCR扩增 | 第30页 |
| 2-6-4 菌株X1和R1对胡萝卜软腐病的拮抗 | 第30-32页 |
| 2-6-4-1 菌株X1和R1对胡萝卜软腐病的拮抗 | 第30-31页 |
| 2-6-4-2 菌株X1和R1粗酶液对胡萝卜软腐病的拮抗 | 第31-32页 |
| 第三章 实验结果 | 第32-48页 |
| 3-1 菌种的筛选和纯化 | 第32页 |
| 3-1-1 菌种的筛选 | 第32页 |
| 3-1-2 菌种的纯化 | 第32页 |
| 3-1-3 所筛得菌株降解AHL能力的进一步验证 | 第32页 |
| 3-2 菌种的鉴定 | 第32-41页 |
| 3-2-1 细菌X1的鉴定 | 第32-34页 |
| 3-2-1-1 形态学观察 | 第32-33页 |
| 3-2-1-2 生理生化特征 | 第33-34页 |
| 3-2-1-3 分子水平16SrDNA鉴定 | 第34页 |
| 3-2-1-3-1 菌株X1基因组DNA的提取 | 第34页 |
| 3-2-1-3-2 16SrDNA的PCR扩增 | 第34页 |
| 3-2-1-3-3 16SrDNA序列测定 | 第34页 |
| 3-2-2 酵母菌R1的鉴定 | 第34-41页 |
| 3-2-2-1 形态学观察 | 第34-35页 |
| 3-2-2-2 生理生化特征 | 第35-36页 |
| 3-2-2-2-1 糖发酵试验 | 第35页 |
| 3-2-2-2-2 碳源同化试验 | 第35-36页 |
| 3-2-2-2-3 其他生理生化试验 | 第36页 |
| 3-2-2-3 分子水平18SrDNA鉴定结 | 第36-41页 |
| 3-2-2-3-1 菌落18SrDNA的PCR扩增结果 | 第36-37页 |
| 3-2-2-3-2 18SrDNA序列测定 | 第37页 |
| 3-2-2-3-3 序列比对结果 | 第37-41页 |
| 3-2-2-3-4 菌株R1的系统发育分析 | 第41页 |
| 3-3 菌的性质研究 | 第41-46页 |
| 3-3-1 菌株X1和R1生长曲线测定 | 第41-42页 |
| 3-3-2 菌株X1和R1最适生长温度 | 第42-43页 |
| 3-3-3 菌株X1和R1最适生长初始pH值 | 第43页 |
| 3-3-4 菌株X1和R1对不同信号分子的降解 | 第43-45页 |
| 3-3-4-1 不同信号分子标准曲线的测定 | 第43-44页 |
| 3-3-4-2 菌株X1和R1对不同信号分子降解曲线的测定 | 第44-45页 |
| 3-3-4-3 菌株X1和R1对不同碳源的利用 | 第45页 |
| 3-3-5 降解酶的性质研究 | 第45页 |
| 3-3-5-1 粗酶液酶活的测试 | 第45页 |
| 3-3-6 菌株X1和R1是否含水解酶的初步检验 | 第45-46页 |
| 3-4 菌株对致病菌拮抗初步研究 | 第46-48页 |
| 3-4-1 菌株X1和R1对胡萝卜软腐病的拮抗 | 第46页 |
| 3-4-2 菌株X1和R1粗酶液对胡萝卜软腐病的拮抗 | 第46-48页 |
| 第四章 讨论 | 第48-50页 |
| 4-1 菌种的筛选和纯化 | 第48页 |
| 4-2 菌种的鉴定 | 第48页 |
| 4-3 菌的性质研究 | 第48-49页 |
| 4-4 菌株对致病菌拮抗初步研究 | 第49-50页 |
| 第五章 结论 | 第50-51页 |
| 参考文献 | 第51-54页 |
| 致谢 | 第54-55页 |
| 攻读学位期间所取得的相关科研成果 | 第55页 |
