| 中文摘要 | 第1-21页 |
| 英文摘要 | 第21-38页 |
| 一、前言 | 第38-55页 |
| 二、研究内容 | 第55-170页 |
| 第一部分 大别山野葛HPLC指纹图谱库的构建 | 第55-123页 |
| 引言 | 第55-57页 |
| 第一章 大别山野葛HPLC指纹图谱方法学研究 | 第57-71页 |
| 1.引言 | 第57-58页 |
| 2.仪器与试剂 | 第58-59页 |
| 3.方法 | 第59-61页 |
| ·色谱条件 | 第59页 |
| ·参照物溶液的制备 | 第59页 |
| ·供试品溶液的制备 | 第59-60页 |
| ·HPLC指纹图谱测定方法 | 第60页 |
| ·方法学考察 | 第60-61页 |
| ·线性关系考察 | 第60页 |
| ·精密度试验 | 第60页 |
| ·加样回收率 | 第60-61页 |
| ·重现性试验 | 第61页 |
| ·稳定性试验 | 第61页 |
| ·专属性试验 | 第61页 |
| 4.结果 | 第61-67页 |
| ·共有峰的指定 | 第62-65页 |
| ·参照峰的指定 | 第65页 |
| ·共有峰的相对保留时间，相对峰面积，共有峰总面积百分比 | 第65-67页 |
| 5.讨论 | 第67-71页 |
| ·有关方法学的考证 | 第67页 |
| ·建立指纹图谱的关键 | 第67-68页 |
| ·大别山系野葛HPLC指纹图谱间的比较 | 第68-71页 |
| 第二章 大别山野葛HPLC指纹图谱库的构建 | 第71-109页 |
| 1.引言 | 第71页 |
| 2.仪器与试剂 | 第71页 |
| 3.方法 | 第71页 |
| 4.结果 | 第71-102页 |
| ·不同季节野葛药材HPLC指纹图谱的比较 | 第71-80页 |
| ·野葛药材不同部位HPLC指纹图谱的比较 | 第80-87页 |
| ·不同年轮野葛药材HPLC指纹图谱的比较 | 第87-92页 |
| ·不同朝向的野葛药材HPLC指纹图谱的比较 | 第92-97页 |
| ·多级提取时对野葛药材HPLC指纹图谱的影响 | 第97-102页 |
| 5.讨论 | 第102-109页 |
| ·有关不同季节葛根素含量的讨论 | 第102页 |
| ·不同季节野葛HPLC指纹图谱的讨论 | 第102-103页 |
| ·野葛不同部位HPLC指纹图谱的讨论 | 第103页 |
| ·野葛不同年轮HPLC指纹图谱的讨论 | 第103页 |
| ·野葛不同朝向HPLC指纹图谱的讨论 | 第103-104页 |
| ·野葛提取中乙醇浓度的探讨 | 第104-108页 |
| ·多级提取时不同提取阶段对野葛药材HPLC指纹图谱的影响 | 第108-109页 |
| 第三章 利用指纹图谱技术探讨传统加工工艺中葛根资源利用度的研究 | 第109-123页 |
| 1.引言 | 第109页 |
| 2.葛根淀粉传统加工工艺的基本工艺过程 | 第109-117页 |
| 3.HPLC指纹图谱测定方法 | 第117页 |
| 4.HPLC指纹图谱测定结果 | 第117-119页 |
| 5.讨论 | 第119-123页 |
| ·葛根淀粉传统加工工艺对葛根资源的利用的不合理性 | 第119页 |
| ·以科学的发展观，遵循循环经济的原则，合理利用自然资源 | 第119-123页 |
| 第二部分 野葛粗提物及其主要成分葛根素改善乙醇神经毒性作用的研究 | 第123-170页 |
| 引言 | 第123-130页 |
| 第一章 乙醇对胚胎期小鼠海马细胞毒性作用的研究 | 第130-154页 |
| 1.引言 | 第130页 |
| 2.材料与方法 | 第130-141页 |
| ·材料 | 第130-133页 |
| ·动物 | 第130-131页 |
| ·主要试剂 | 第131-132页 |
| ·主要仪器及器皿 | 第132-133页 |
| ·方法 | 第133-141页 |
| ·细胞培养主要用液 | 第133-134页 |
| ·MEM基础培养液的配置 | 第133页 |
| ·完全培养液的配置 | 第133页 |
| ·1×PBS | 第133页 |
| ·0.25％胰蛋白酶 | 第133-134页 |
| ·胎鼠海马细胞的分离及培养 | 第134页 |
| ·细胞毒性实验 | 第134-135页 |
| ·乙醇对hsp70和SOD mRNA表达影响 | 第135-137页 |
| ·处理因素的实施 | 第135页 |
| ·细胞总mRNA的提取 | 第135-136页 |
| ·逆转录合成cDNA | 第136页 |
| ·PCR扩增 | 第136-137页 |
| ·RT-PCR结果分析 | 第137页 |
| ·乙醇对hsp70和SOD蛋白表达影响 | 第137-141页 |
| ·主要溶液 | 第137-139页 |
| ·检测样本的制备 | 第139页 |
| ·制胶 | 第139-140页 |
| ·电泳 | 第140页 |
| ·转膜 | 第140-141页 |
| ·封闭 | 第141页 |
| ·靶蛋白与第一抗体反应 | 第141页 |
| ·第二抗体反应 | 第141页 |
| ·结果显示 | 第141页 |
| ·统计学处理 | 第141页 |
| 3.结果 | 第141-146页 |
| ·乙醇对海马细胞活力的影响 | 第141-142页 |
| ·细胞总mRNA提取效果检测 | 第142-143页 |
| ·乙醇对海马细胞hsp70及SOD mRNA表达的影响 | 第143-145页 |
| ·乙醇对海马细胞hsp70及SOD蛋白表达的影响 | 第145-146页 |
| 4.讨论 | 第146-154页 |
| ·乙醇导致神经毒性模型的建立 | 第146-147页 |
| ·HSP对乙醇致神经毒性的保护作用 | 第147-150页 |
| ·SOD对乙醇致神经毒性的保护作用 | 第150-154页 |
| 第二章 野葛粗提物及其主要成分葛根素对乙醇引起海马细胞毒性保护作用的研究 | 第154-170页 |
| 1.引言 | 第154页 |
| 2.材料与方法 | 第154-161页 |
| ·材料 | 第154-157页 |
| ·动物 | 第154-155页 |
| ·主要试剂 | 第155-156页 |
| ·主要仪器及器皿 | 第156-157页 |
| ·方法 | 第157-158页 |
| ·制备葛根粗提物 | 第157页 |
| ·细胞培养主要用液 | 第157-158页 |
| ·MEM基础培养液的配置 | 第157-158页 |
| ·完全培养液的配置 | 第158页 |
| ·1×PBS | 第158页 |
| ·0.25％胰蛋白酶 | 第158页 |
| ·实验分组 | 第158-159页 |
| ·胎鼠海马细胞的分离及培养 | 第159页 |
| ·CP和SP对海马细胞ICO浓度的建立 | 第159页 |
| ·CP和SP对乙醇引起的海马细胞毒性的拮抗作用 | 第159-160页 |
| ·CP和SP对乙醇引起的Hsp70和SOD mRNA表达变化的影响 | 第160页 |
| ·CP和SP对乙醇引起的Hsp70和SOD蛋白表达变化的影响 | 第160-161页 |
| ·细胞总蛋白的提取 | 第160页 |
| ·Western Blot操作步骤 | 第160-161页 |
| ·统计学处理 | 第161页 |
| 3 结果 | 第161-165页 |
| ·CP和SP对海马细胞活力的影响 | 第161-162页 |
| ·CP和SP均可拮抗乙醇引起的海马细胞毒性作用 | 第162-163页 |
| ·CP和SP均可抑制乙醇引起的Hsp70和SOD表达量升高 | 第163-165页 |
| 4.讨论 | 第165-170页 |
| ·CP和SP对乙醇抑制海马细胞增殖活力的影响 | 第165-166页 |
| ·CP和SP对乙醇所致海马细胞HSP70表达的影响 | 第166-167页 |
| ·CP和SP对乙醇所致海马细胞SOD表达的影响 | 第167-168页 |
| ·创建中药“谱效”研究 | 第168-170页 |
| 三、参考文献 | 第170-202页 |
| 四、酒精性肝病发病机制的研究进展(综述) | 第202-234页 |
| 五、致谢 | 第234-236页 |
| 六、声明 | 第236页 |
