| 第一章 手性药物的毛细管电泳分离研究进展 | 第1-37页 |
| 1 引言 | 第17-18页 |
| 2 毛细管电泳及其对手性药物拆分的基本原理 | 第18-19页 |
| 3 手性药物拆分的CZE模式 | 第19-35页 |
| 3．1 毛细管区带电泳（CZE） | 第20-31页 |
| 3．1．1 基于配体交换的CZE | 第20页 |
| 3．1．2 环糊精-CZE体系 | 第20-27页 |
| 3．1．3 冠醚-CZE体系 | 第27-28页 |
| 3．1．4 糖类糊精-CZE体系 | 第28-29页 |
| 3．1．5 大分子抗生素-CZE体系 | 第29-30页 |
| 3．1．6 蛋白质-CZE体系 | 第30-31页 |
| 3．1．7 非水-CZE体系 | 第31页 |
| 3．2 毛细管胶束电动色谱（MECC） | 第31-34页 |
| 3．2．1 单一胶束体系 | 第32-33页 |
| 3．2．2 混合胶束体系 | 第33-34页 |
| 3．3 毛细管电色谱 | 第34-35页 |
| 3．3．1 填充柱毛细管电色谱 | 第34页 |
| 3．3．2 开管柱毛细管电色谱 | 第34-35页 |
| 4 展望 | 第35-37页 |
| 第二章 单2-丙酮基-2-羟丙基-β-CD的合成及其在手性药物毛细管区带电泳拆分中的应用 | 第37-64页 |
| 1 前言 | 第37页 |
| 2 实验部分 | 第37-45页 |
| 2．1 仪器设备 | 第37页 |
| 2．2 试剂与样品 | 第37-42页 |
| 2．3 实验方法 | 第42页 |
| 2．4 DM-β-CD的合成 | 第42-44页 |
| 2．5 单2-丙酮基-2-羟丙基-β-CD的合成 | 第44-45页 |
| 3 结果与讨论 | 第45-62页 |
| 3．1 pH对分离的影响 | 第45-48页 |
| 3．2 手性拆分剂用量对分离度的影响 | 第48-55页 |
| 3．3 DM-β-CD及2-丙酮基-2-羟丙基-β-CD和肾上腺素形成配合物稳定常数的计算 | 第55-62页 |
| 4 小结 | 第62-64页 |
| 第三章 新型阳离子型CD衍生物的合成及其在手性药物毛细管区带电泳拆分中的应用 | 第64-82页 |
| 1 实验部分 | 第64-68页 |
| 1．1 仪器设备 | 第64页 |
| 1．2 试剂与样品 | 第64页 |
| 1．3 实验方法 | 第64页 |
| 1．4 合成 | 第64-68页 |
| 1．4．1 单2-HP-β-CD的合成 | 第65页 |
| 1．4．2 产物的NMR表征 | 第65-66页 |
| 1．4．3 新型阳离子CD衍生物2-（N-胺乙基-N代丙酮基-2-羟丙基-β-CD（a-β-CD）的合成 | 第66-67页 |
| 1．4．4 产物的NMR表征 | 第67-68页 |
| 2 结果与讨论 | 第68-80页 |
| 2．1 新型衍生物a-β-CD的性质 | 第68页 |
| 2．2 酸性药物的拆分 | 第68-71页 |
| 2．2．1 a-β-CD浓度对手性拆分的影响 | 第68-69页 |
| 2．2．2 背景电解质pH对a-β-CD手性拆分的影响 | 第69-71页 |
| 2．3 中性和碱性药物的拆分 | 第71-80页 |
| 3 小结 | 第80-82页 |
| 第四章 手性选择剂单-3-氧苯基-氨甲酰基-β-CD和单-6-氧苯基-氯甲酰基-β-CD的合成及其对手性药物的CZE拆分 | 第82-102页 |
| 1 前言 | 第82页 |
| 2 实验部分 | 第82-89页 |
| 2．1 仪器设备 | 第82页 |
| 2．2 试样与样品 | 第82页 |
| 2．3 实验方法 | 第82-83页 |
| 2．4 合成 | 第83-89页 |
| 2．4．1 单-3-氧苯基-氨甲酰基-β-CD的合成及表征 | 第83-86页 |
| 2．4．2 单-6-氧苯基-氨甲酰基-β-CD的合成及表征 | 第86-89页 |
| 3 结果与讨论 | 第89-100页 |
| 3．1 单-3-氧苯基-氨甲酰基-β-CD对手性药物的CZE拆分 | 第89-96页 |
| 3．1．1 缓冲液pH对分离的影响 | 第89-90页 |
| 3．1．2 手性选择剂浓度对分离度的影响 | 第90-92页 |
| 3．1．3 缓冲液浓度对分离度的影响 | 第92-93页 |
| 3．1．4 有机溶剂的加入对分离度的影响 | 第93-96页 |
| 3．2 单-6-氧苯基-氨甲酰基-β-CD对手性药物的CZE拆分 | 第96-100页 |
| 4 小结 | 第100-102页 |
| 第五章 CD第一面修饰产物β-CD-CHO和β-CD-COOH的合成及对手性药物的CZE拆分 | 第102-115页 |
| 1 前言 | 第102页 |
| 2 实验部分 | 第102-107页 |
| 2．1 仪器设备 | 第102页 |
| 2．2 试剂与样品 | 第102页 |
| 2．3 实验方法 | 第102-103页 |
| 2．4 合成 | 第103-107页 |
| 2．4．1 6-β-CD-CHO的合成与NMR表征 | 第103-105页 |
| 2．4．2 6-β-CD-COOH的合成与NMR表征 | 第105-107页 |
| 3 结果与讨论 | 第107-113页 |
| 3．1 6-β-CD-COOH对手性药物的CZE拆分 | 第107-111页 |
| 3．1．1 酸度的影响 | 第107-108页 |
| 3．1．2 β-CD-COOH浓度对Rs的影响 | 第108-111页 |
| 3．2 β-CD-CHO对手性药物的CZE拆分 | 第111-113页 |
| 4 小结 | 第113-115页 |
| 第六章 二元环糊精体系对手性药物的CZE分离 | 第115-126页 |
| 1 前言 | 第115页 |
| 2 实验部分 | 第115-119页 |
| 2．1 仪器设备 | 第115页 |
| 2．2 试剂与样品 | 第115页 |
| 2．3 实验方法 | 第115-116页 |
| 2．4 合成路线 | 第116-119页 |
| 2．4．1 合成 | 第116页 |
| 2．4．2 结构分析 | 第116-119页 |
| 2．4．2．1 红外光谱分析 | 第116-118页 |
| 2．4．2．2 NMR光谱 | 第118页 |
| 2．4．2．3 溶解度的变化 | 第118-119页 |
| 2．4．2．4 合成中催化剂的选择 | 第119页 |
| 3 结果与讨论 | 第119-125页 |
| 3．1 缓冲液pH和浓度的影响 | 第119-121页 |
| 3．2 混合物的含量对分离度的影响 | 第121-123页 |
| 3．3 有机溶液的加入对分离度的影响 | 第123-124页 |
| 3．4 可能的机理探讨 | 第124-125页 |
| 4 小结 | 第125-126页 |
| 第七章 以L-氨基酸为手性选择剂对手性药物的CZE拆分 | 第126-145页 |
| 1 前言 | 第126页 |
| 2 实验部分 | 第126-127页 |
| 2．1 仪器、样品与试剂 | 第126页 |
| 2．2 实验方法 | 第126-127页 |
| 3 结果与讨论 | 第127-143页 |
| 3．1 以L-白氨酸为手性选择剂对手性药物的CZE拆分 | 第127-131页 |
| 3．1．1 缓冲体系的影响 | 第127页 |
| 3．1．2 L-白氨酸用量对实验结果的影响 | 第127-128页 |
| 3．1．3 硼砂浓度对分离效果的影响 | 第128-129页 |
| 3．1．4 pH对分离效果的影响 | 第129-131页 |
| 3．2 以L-谷氨酰胺为手性选择剂对手性药物的CZE拆分 | 第131-136页 |
| 3．2．1 缓冲体系（BGE）的影响 | 第131-132页 |
| 3．2．2 L-谷氨酰胺用量的影响 | 第132-133页 |
| 3．2．3 缓冲溶液浓度对分离效果的影响 | 第133-134页 |
| 3．2．4 缓冲溶液pH值对分离的影响 | 第134-136页 |
| 3．3 以L-天冬氨酸为手性选择剂对手性药物的CZE拆分 | 第136-141页 |
| 3．3．1 缓冲体系的选择 | 第136页 |
| 3．3．2 硼砂浓度对分离的影响 | 第136-137页 |
| 3．3．3 L-天冬氨酸浓度对分离的影响 | 第137-141页 |
| 3．4 以L-谷氨酸为手性选择剂对手性药物的CZE拆分 | 第141-143页 |
| 4 手性识别机理的初步探讨 | 第143-144页 |
| 5 小结 | 第144-145页 |
| 结语 | 第145-148页 |
| 参考文献 | 第148-155页 |
| 简历 | 第155-157页 |
| 致谢 | 第157-158页 |
