| 中文摘要 | 第1-8页 |
| 英文摘要 | 第8-9页 |
| 引言 | 第9-10页 |
| 第一章 文献综述 | 第10-23页 |
| 1．1 植物抗虫基因工程研究进展 | 第10-17页 |
| 1．1．1 BT毒蛋白基因 | 第10-12页 |
| 1．1．2 植物凝集素（lectin）基因 | 第12-13页 |
| 1．1．3 蛋白酶抑制剂抗虫基因 | 第13-17页 |
| 1．2 农杆菌介导的芸苔属植物遗传转化的研究进展 | 第17-23页 |
| 1．2．1 遗传转化的目的基因 | 第18-20页 |
| 1．2．2 转化受体系统类型 | 第20-23页 |
| 第二章 农杆菌介导的不结球白莱遗传转化体系的建立 | 第23-33页 |
| 2．1 材料与方法 | 第23-25页 |
| 2．1．1 无菌苗的培养 | 第23页 |
| 2．1．2 根癌农杆菌及其质粒 | 第23页 |
| 2．1．3 农杆菌菌种的活化 | 第23页 |
| 2．1．4 植物激素对不定芽诱导率的效应 | 第23-24页 |
| 2．1．5 预处理对不定芽诱导率的效应 | 第24页 |
| 2．1．6 卡那霉素（kan）浓度试验 | 第24页 |
| 2．1．7 羧苄青霉素（Carb）对不定芽诱导率的影响 | 第24页 |
| 2．1．8 农杆菌侵染浓度对不定芽诱导率的影响 | 第24页 |
| 2．1．9 农杆菌共培养时间对不定芽诱导率的影响 | 第24-25页 |
| 2．2 结果与分析 | 第25-30页 |
| 2．2．1 植物激素对不定芽分化的影响 | 第25页 |
| 2．2．2 预处理对不定芽分化的效应 | 第25-28页 |
| 2．2．3 卡那霉素（kan）浓度试验 | 第28页 |
| 2．2．4 羧苄青霉素对不定芽诱导率的影响 | 第28-29页 |
| 2．2．5 感染浓度对不定芽诱导率的影响 | 第29页 |
| 2．2．6 共培养时间对不定芽诱导率的影响 | 第29-30页 |
| 2．3 讨论 | 第30-33页 |
| 第三章 不结球白菜CpTI基因的遗传转化 | 第33-43页 |
| 3．1 材料与方法 | 第33-36页 |
| 3．1．1 材料 | 第33-34页 |
| 3．1．1．1 供试品种 | 第33页 |
| 3．1．1．2 菌种和质粒 | 第33页 |
| 3．1．1．3 培养基 | 第33-34页 |
| 3．1．2 方法 | 第34-36页 |
| 3．1．2．1 农杆菌菌种的制备 | 第34-35页 |
| 3．1．2．2 不结球白菜的遗传转化 | 第35-36页 |
| 3．2 结果 | 第36-37页 |
| 3．3 讨论 | 第37-43页 |
| 3．3．1 带柄子叶诱导不定芽的产生 | 第37-38页 |
| 3．3．2 那霉素抗性苗的筛选 | 第38-43页 |
| 第四章 不结球白莱转化植株的分子检测 | 第43-51页 |
| 4．1 材料与方法 | 第43-48页 |
| 4．1．1 阳性质粒的提取和纯化 | 第43-44页 |
| 4．1．1．1 阳性质粒的简易提取法 | 第43页 |
| 4．1．1．2 SDS-碱裂解法提取质粒 | 第43-44页 |
| 4．1．2 CTAB改良法提取不结球白菜基因组DNA | 第44-45页 |
| 4．1．3 PCR扩增检测 | 第45-46页 |
| 4．1．4 PCR-Southern杂交 | 第46-48页 |
| 4．2 结果与分析 | 第48-51页 |
| 4．2．1 转化植株的PCR检测 | 第48页 |
| 4．2．2 PCR-Southern杂交检测 | 第48-51页 |
| 参考文献 | 第51-61页 |
| 致谢 | 第61页 |