| 摘要 | 第1-14页 |
| ABSTRACT | 第14-18页 |
| 符号及缩略语 | 第18-21页 |
| 前言 | 第21-22页 |
| 第一章 文献综述 | 第22-48页 |
| 1 大肠杆菌内毒素的研究进展 | 第22-26页 |
| ·LPS的结构特点 | 第22-23页 |
| ·LPS的感染途径 | 第23页 |
| ·LPS引发的效应 | 第23-25页 |
| ·LPS的作用机理 | 第25-26页 |
| 2 白头翁汤的研究进展 | 第26-31页 |
| ·白头翁汤及其主要成分 | 第26-27页 |
| ·白头翁及其主要成分 | 第27-28页 |
| ·黄连及其主要成分 | 第28-29页 |
| ·黄柏及其主要成分 | 第29-30页 |
| ·秦皮及其主要成分 | 第30-31页 |
| 3 微血管内皮细胞的研究进展 | 第31-34页 |
| ·MVEC与病理学的关系 | 第31-32页 |
| ·MVEC与免疫学的关系 | 第32页 |
| ·MVEC与中医学的关系 | 第32-34页 |
| 4 几种细胞因子的研究进展 | 第34-40页 |
| ·一氧化氮 | 第34-35页 |
| ·内皮素-1 | 第35页 |
| ·肿瘤坏死因子-α | 第35-36页 |
| ·白介素-1α | 第36-37页 |
| ·白介素-6 | 第37页 |
| ·白介素-8 | 第37-38页 |
| ·E-选择素 | 第38-39页 |
| ·血栓素B_2 | 第39页 |
| ·前列腺素I_2 | 第39-40页 |
| 参考文献 | 第40-48页 |
| 第二章 白头翁汤抗大肠杆菌内毒素的作用观察 | 第48-60页 |
| 摘要 | 第48页 |
| 1 材料与方法 | 第48-50页 |
| ·白头翁汤的制备 | 第48-49页 |
| ·LPS的制备 | 第49页 |
| ·主要仪器 | 第49页 |
| ·动物分组 | 第49页 |
| ·测定指标 | 第49页 |
| ·数据分析 | 第49-50页 |
| 2 结果 | 第50-54页 |
| ·死亡率的变化 | 第50-51页 |
| ·体温的变化 | 第51-52页 |
| ·体重的变化 | 第52页 |
| ·血像的变化 | 第52-53页 |
| ·器官指数的变化 | 第53-54页 |
| 3 讨论 | 第54-57页 |
| ·白头翁汤防治LPS引发的高死亡率和体温降低 | 第54-55页 |
| ·白头翁汤防治LPS引发的体重减轻 | 第55页 |
| ·白头翁汤防治LPS引发的血像紊乱和内脏病变 | 第55-56页 |
| ·白头翁汤防治大肠杆菌病的疗效 | 第56页 |
| ·中药抗LPS的药理作用 | 第56-57页 |
| 参考文献 | 第57-58页 |
| Abstract | 第58-60页 |
| 第三章 大鼠肠黏膜微血管内皮细胞的培养与鉴定 | 第60-70页 |
| 摘要 | 第60页 |
| 1 材料与方法 | 第60-64页 |
| ·药品与试剂 | 第60-62页 |
| ·主要仪器 | 第62页 |
| ·原代培养 | 第62-63页 |
| ·纯化处理 | 第63页 |
| ·传代培养 | 第63页 |
| ·细胞鉴定 | 第63-64页 |
| ·细胞计数 | 第64页 |
| 2 结果 | 第64-65页 |
| ·MVEC的形态学特点 | 第64页 |
| ·MVEC的免疫荧光鉴定 | 第64-65页 |
| ·MVEC的硝酸银染色 | 第65页 |
| 3 讨论 | 第65-67页 |
| ·MVEC的原代培养 | 第65页 |
| ·MVEC的纯化传代 | 第65-66页 |
| ·MVEC的综合鉴定 | 第66-67页 |
| 参考文献 | 第67-68页 |
| Abstract | 第68-70页 |
| 第四章 白头翁汤对LPS诱导MVEC基因表达谱的影响 | 第70-85页 |
| 摘要 | 第70页 |
| 1 材料与方法 | 第70-77页 |
| ·药品与试剂 | 第70-71页 |
| ·主要仪器 | 第71页 |
| ·细胞的分组处理 | 第71页 |
| ·总RNA的抽提 | 第71-72页 |
| ·总RNA的质检 | 第72页 |
| ·总RNA的纯化 | 第72页 |
| ·First Strand cDNA合成 | 第72-73页 |
| ·Second Strand cDNA合成 | 第73-74页 |
| ·Double-Stranded cDNA纯化 | 第74页 |
| ·体外转录合成生物素标记cRNA | 第74-75页 |
| ·cRNA纯化 | 第75页 |
| ·cRNA片段化 | 第75-76页 |
| ·芯片杂交 | 第76页 |
| ·芯片染色与扫描 | 第76页 |
| ·数据分析 | 第76-77页 |
| 2 结果 | 第77-80页 |
| ·总RNA质量检测 | 第77页 |
| ·差异表达基因 | 第77-80页 |
| 3 讨论 | 第80-82页 |
| ·LPS对正常的MVEC基因表达的影响 | 第80-81页 |
| ·PD对LPS刺激的MVEC基因表达的影响 | 第81页 |
| ·LPS和PD对正常的MVEC基因表达的影响 | 第81-82页 |
| ·基因芯片的质量控制 | 第82页 |
| 参考文献 | 第82-83页 |
| Abstract | 第83-85页 |
| 第五章 LPS诱导的MVEC差异表达基因的Real-time RT-PCR分析 | 第85-94页 |
| 摘要 | 第85页 |
| 1 材料与方法 | 第85-91页 |
| ·药品与试剂 | 第85-86页 |
| ·主要仪器 | 第86页 |
| ·目标基因的引物序列 | 第86-87页 |
| ·细胞的分组处理 | 第87页 |
| ·总RNA的抽提 | 第87-88页 |
| ·总RNA的质检 | 第88页 |
| ·总RNA的消化 | 第88页 |
| ·总RNA的纯化 | 第88页 |
| ·总RNA的消化效果验证 | 第88-89页 |
| ·RNA的逆转录 | 第89-90页 |
| ·Real-time RT-PCR反应 | 第90页 |
| ·扩增效率的计算 | 第90页 |
| ·变化倍数的计算 | 第90-91页 |
| 2 结果 | 第91页 |
| ·RNA质量检测 | 第91页 |
| ·目标基因的检测结果 | 第91页 |
| 3 讨论 | 第91-92页 |
| ·Real-Time RT-PCR检测的结果 | 第91-92页 |
| ·Real-Time RT-PCR方法的选择 | 第92页 |
| ·Real-Time RT-PCR操作的改进 | 第92页 |
| 参考文献 | 第92-93页 |
| Abstract | 第93-94页 |
| 第六章 白头翁汤及其主要成分对LPS诱导MVEC分泌NO和ET-1的影响 | 第94-104页 |
| 摘要 | 第94页 |
| 1 材料与方法 | 第94-97页 |
| ·药品与试剂 | 第94-95页 |
| ·主要仪器 | 第95页 |
| ·细胞的分组处理 | 第95页 |
| ·细胞增殖率的检测 | 第95-96页 |
| ·NO的检测 | 第96页 |
| ·ET-1的检测 | 第96页 |
| ·数据处理 | 第96-97页 |
| 2 结果 | 第97-99页 |
| ·细胞增殖率的变化 | 第97页 |
| ·NO含量的变化 | 第97-98页 |
| ·ET-1含量的变化 | 第98-99页 |
| 3 讨论 | 第99-101页 |
| ·白头翁汤及其主要成分对细胞增殖的影响 | 第99页 |
| ·白头翁汤及其主要成分对NO分泌的影响 | 第99-100页 |
| ·白头翁汤及其主要成分对ET-1分泌的影响 | 第100-101页 |
| 参考文献 | 第101-102页 |
| Abstract | 第102-104页 |
| 第七章 白头翁汤及其主要成分对LPS诱导MVEC分泌IL-1α,IL-6和IL-8的影响 | 第104-114页 |
| 摘要 | 第104页 |
| 1 材料与方法 | 第104-106页 |
| ·药品与试剂 | 第104-105页 |
| ·主要仪器 | 第105页 |
| ·细胞的分组处理 | 第105页 |
| ·IL-1α,IL-6和IL-8的检测 | 第105-106页 |
| ·数据处理 | 第106页 |
| 2 结果 | 第106-108页 |
| ·IL-1α含量的变化 | 第106-107页 |
| ·IL-6含量的变化 | 第107页 |
| ·IL-8含量的变化 | 第107-108页 |
| 3 讨论 | 第108-110页 |
| ·白头翁汤及其主要成分对IL-1α分泌的影响 | 第108-109页 |
| ·白头翁汤及其主要成分对IL-6分泌的影响 | 第109页 |
| ·白头翁汤及其主要成分对IL-8分泌的影响 | 第109-110页 |
| 参考文献 | 第110-111页 |
| Abstract | 第111-114页 |
| 第八章 白头翁汤及其主要成分对LPS诱导MVEC分泌TNF-α和E-selectin的影响 | 第114-122页 |
| 摘要 | 第114页 |
| 1 材料与方法 | 第114-116页 |
| ·药品与试剂 | 第114-115页 |
| ·主要仪器 | 第115页 |
| ·细胞的分组处理 | 第115页 |
| ·TNF-α和E-selectin的检测 | 第115-116页 |
| ·数据处理 | 第116页 |
| 2 结果 | 第116-117页 |
| ·TNF-α含量的变化 | 第116-117页 |
| ·E-selectin含量的变化 | 第117页 |
| 3 讨论 | 第117-119页 |
| ·白头翁汤及其主要成分对TNF-α分泌的影响 | 第117-118页 |
| ·白头翁汤及其主要成分对E-selectin分泌的影响 | 第118-119页 |
| ·LPS诱导的炎症反应与毒理效应 | 第119页 |
| 参考文献 | 第119-120页 |
| Abstract | 第120-122页 |
| 第九章 白头翁汤及其主要成分对LPS诱导MVEC分泌TXB_2和6-keto-PGF_(1α)的影响 | 第122-130页 |
| 摘要 | 第122页 |
| 1 材料与方法 | 第122-123页 |
| ·药品与试剂 | 第122页 |
| ·主要仪器 | 第122页 |
| ·细胞的分组处理 | 第122-123页 |
| ·TXB_2和6-keto-PGF_(1α)的检测 | 第123页 |
| ·数据处理 | 第123页 |
| 2 结果 | 第123-125页 |
| ·TXB_2含量的变化 | 第124页 |
| ·6-keto-PGF_(1α)含量的变化 | 第124-125页 |
| 3 讨论 | 第125-127页 |
| ·白头翁汤及其主要成分对TXB_2分泌的影响 | 第125-126页 |
| ·白头翁汤及其主要成分对6-keto-PGF_(1α)分泌的影响 | 第126页 |
| ·MVEC的药理学研究意义 | 第126-127页 |
| 参考文献 | 第127-128页 |
| Abstract | 第128-130页 |
| 全文结论 | 第130-132页 |
| 附图 | 第132-140页 |
| 致谢 | 第140-142页 |
| 攻读学位期间发表和完成的学术论文 | 第142页 |
