中文摘要 | 第1-6页 |
Abstract | 第6-12页 |
缩略语 | 第12-13页 |
前言 | 第13-15页 |
研究现状和成果 | 第13-14页 |
研究目的、方法 | 第14-15页 |
一、大鼠骨髓MSCs体外分离培养及纯化鉴定 | 第15-31页 |
·对象和方法 | 第15-19页 |
·实验动物 | 第15页 |
·主要实验试剂 | 第15页 |
·主要仪器、器械和耗材 | 第15-16页 |
·主要试剂的配制 | 第16-17页 |
·实验方法 | 第17-19页 |
·结果 | 第19-27页 |
·SD大鼠骨髓MSCs的原代培养 | 第19-20页 |
·SD大鼠骨髓MSCs的传代培养、贴壁纯化 | 第20页 |
·SD大鼠骨髓MSCs的生长曲线 | 第20-21页 |
·SD大鼠骨髓MSCs的表型分析 | 第21页 |
·SD大鼠骨髓MSCs经液氮冻存后复苏 | 第21-27页 |
·讨论 | 第27-30页 |
·骨髓MSCs简介 | 第27页 |
·骨髓MSCs的分离纯化方法 | 第27-28页 |
·骨髓MSCs的生长特性 | 第28-29页 |
·骨髓MSCs的表面标志 | 第29-30页 |
·骨髓MSCs分泌神经营养因子功能 | 第30页 |
·小结 | 第30-31页 |
二、质粒pIRESneo-EGFP-BDNF构建、鉴定及体外转染骨髓MSCs | 第31-49页 |
·对象和方法 | 第31-40页 |
·主要实验试剂 | 第31-32页 |
·主要仪器和耗材 | 第32-33页 |
·主要试剂的配制 | 第33-34页 |
·实验方法 | 第34-40页 |
·结果 | 第40-44页 |
·重组质粒的构建 | 第40-41页 |
·重组质粒的酶切鉴定 | 第41-42页 |
·Western blot检测结果 | 第42-43页 |
·pIRESneo-EGFP-BDNF质粒转染骨髓MSCs | 第43-44页 |
·讨论 | 第44-48页 |
·脑源性神经生长因子(BDNF)与阿尔茨海默病(AD) | 第44页 |
·MSCs是很好的基因载体细胞 | 第44-46页 |
·转染质粒及转染方法的选择 | 第46-48页 |
·小结 | 第48-49页 |
三、BDNF修饰骨髓MSCs对AD大鼠学习记忆及超微结构的影响 | 第49-72页 |
·对象和方法 | 第49-54页 |
·实验动物 | 第49页 |
·主要实验试剂 | 第49-50页 |
·主要仪器、器械和耗材 | 第50页 |
·主要试剂的配制 | 第50-51页 |
·实验方法 | 第51-54页 |
·结果 | 第54-67页 |
·定位航行试验结果 | 第55页 |
·空间探索试验结果 | 第55页 |
·光镜结果 | 第55-56页 |
·电镜结果 | 第56-67页 |
·讨论 | 第67-71页 |
·采用SD大鼠制备AD模型 | 第67-68页 |
·Morris水迷宫的方法评价AD大鼠模型的学习记忆能力 | 第68-69页 |
·光镜与电镜下AD大鼠海马CA1区病理特点 | 第69-70页 |
·移植BDNF基因工程细胞治疗AD的作用 | 第70-71页 |
·小结 | 第71-72页 |
四、BDNF修饰骨髓MSCs对AD大鼠海马BDNF和TrkB表达的影响 | 第72-86页 |
·对象和方法 | 第72-77页 |
·实验动物 | 第72页 |
·主要实验试剂 | 第72-73页 |
·主要仪器、器械和耗材 | 第73页 |
·主要试剂的配制 | 第73-74页 |
·实验方法 | 第74-77页 |
·结果 | 第77-81页 |
·结果分析方法 | 第77-78页 |
·各组海马组织BDNF的表达 | 第78页 |
·各组海马组织TrkB的表达 | 第78-81页 |
·讨论 | 第81-85页 |
·阿尔茨海默病(AD)概述 | 第81-82页 |
·BDNF在中枢神经系统的生物学作用 | 第82-83页 |
·BDNF基因治疗 | 第83-84页 |
·TrKB是BDNF的功能型受体 | 第84-85页 |
·小结 | 第85-86页 |
全文结论 | 第86-87页 |
论文创新点 | 第87-88页 |
参考文献 | 第88-98页 |
发表论文和参加科研情况说明 | 第98-99页 |
综述 间充质干细胞与神经系统变性疾病 | 第99-124页 |
综述参考文献 | 第113-124页 |
致谢 | 第124页 |