| 中文摘要 | 第2-4页 |
| Abstract | 第4-5页 |
| 中文文摘 | 第6-14页 |
| 绪论 | 第14-22页 |
| 1 前言 | 第14页 |
| 2 肿瘤的成因 | 第14-15页 |
| 2.1 内因 | 第14页 |
| 2.2 外因 | 第14-15页 |
| 3 肿瘤的治疗 | 第15-17页 |
| 3.1 物理疗法 | 第15页 |
| 3.2 化学疗法 | 第15页 |
| 3.3 生物疗法 | 第15-17页 |
| 4 N-CWS研究及临床应用进展 | 第17页 |
| 4.1 N-CWS研究 | 第17页 |
| 4.2 N-CWS临床应用进展 | 第17页 |
| 5 肽聚糖的化学组成与结构 | 第17-18页 |
| 6 肽聚糖的生物活性及功能 | 第18-20页 |
| 6.1 免疫调节作用 | 第18-19页 |
| 6.2 抑制肿瘤作用 | 第19页 |
| 6.3 细胞毒性作用 | 第19-20页 |
| 7 本课题的研究内容及意义 | 第20-22页 |
| 7.1 本课题的研究意义 | 第20页 |
| 7.2 主要内容 | 第20-22页 |
| 第一章 N-CWS生产菌色素的研究和N-CWS-PG制备 | 第22-40页 |
| 第一节 N-CWS生产菌色素的提取及鉴别研究 | 第22-28页 |
| 1.1 材料 | 第22页 |
| 1.2 方法 | 第22-24页 |
| 1.2.1 主要培养基及试剂的配制 | 第22-23页 |
| 1.2.2 发酵种子液的培养 | 第23页 |
| 1.2.3 发酵扩大培养 | 第23页 |
| 1.2.4 湿菌菌体的收集及处理 | 第23页 |
| 1.2.5 色素的提取 | 第23页 |
| 1.2.6 色素热稳定性试验 | 第23-24页 |
| 1.2.7 色素的显色反应 | 第24页 |
| 1.2.8 色素薄层层析 | 第24页 |
| 1.3 结果与分析 | 第24-27页 |
| 1.3.1 色素的提取及热稳定试验 | 第24-25页 |
| 1.3.2 色素显色试验 | 第25-26页 |
| 1.3.3 簿层层析试验 | 第26-27页 |
| 1.4 小结与讨论 | 第27-28页 |
| 第二节 N-CWS-PG的制备 | 第28-40页 |
| 2.1 材料 | 第28页 |
| 2.2 方法 | 第28-32页 |
| 2.2.1 主要培养基及试剂的配制 | 第28-29页 |
| 2.2.2 红色诺卡氏菌的发酵培养及菌体收集 | 第29页 |
| 2.2.3 N-CWS制备 | 第29-30页 |
| 2.2.4 脂类去除方法的初步探索 | 第30-31页 |
| 2.2.5 正交试验优化去脂工艺 | 第31页 |
| 2.2.6 N-CWS-PG制备 | 第31-32页 |
| 2.3 结果与分析 | 第32-39页 |
| 2.3.1 N-CWS的制备 | 第32-33页 |
| 2.3.2 脂类去除方法的结果分析 | 第33-36页 |
| 2.3.3 正交试验 | 第36-38页 |
| 2.3.4 N-CWS-PG的制备 | 第38-39页 |
| 2.4 小结与讨论 | 第39-40页 |
| 第二章 N-CWS-PG纯度的鉴定 | 第40-54页 |
| 1.1 材料 | 第40页 |
| 1.2 仪器 | 第40页 |
| 1.3 方法 | 第40-43页 |
| 1.3.1 主要溶液的配制 | 第40-41页 |
| 1.3.2 溶菌酶处理 | 第41页 |
| 1.3.3 氨基酸分析 | 第41页 |
| 1.3.4 蛋白质含量测定 | 第41-42页 |
| 1.3.5 总糖含量测定 | 第42页 |
| 1.3.6 氨基己糖含量测定 | 第42-43页 |
| 1.3.7 总脂含量测定 | 第43页 |
| 1.4 结果与分析 | 第43-51页 |
| 1.4.1 溶菌酶实验 | 第43-45页 |
| 1.4.2 氨基酸分析 | 第45-48页 |
| 1.4.3 蛋白质含量的测定 | 第48页 |
| 1.4.4 总糖含量的测定 | 第48-49页 |
| 1.4.5 氨基己糖含量的测定 | 第49-50页 |
| 1.4.6 总脂含量的测定 | 第50-51页 |
| 1.5 小结与讨论 | 第51-54页 |
| 第三章 N-CWS-PG给药血清对肿瘤细胞体外增殖抑制作用的研究 | 第54-64页 |
| 第一节 N-CWS-PG给药血清对HepG2细胞体外增殖的抑制作用 | 第54-60页 |
| 1.1 材料 | 第54-55页 |
| 1.2 实验药物 | 第55页 |
| 1.3 实验动物及适应性饲养 | 第55页 |
| 1.4 方法 | 第55-58页 |
| 1.4.1 试剂的配置及处理 | 第55页 |
| 1.4.2 细胞培养 | 第55-56页 |
| 1.4.3 给药量的初步确定 | 第56页 |
| 1.4.4 血清的制备 | 第56-57页 |
| 1.4.5 给药血清对HepG2的细胞毒性 | 第57页 |
| 1.4.6 血清药理学方法的验证 | 第57-58页 |
| 1.5 结果与分析 | 第58-60页 |
| 1.5.1 血清对HepG2的细胞毒性 | 第58-59页 |
| 1.5.2 血清药理学方法的验证 | 第59-60页 |
| 第二节 N-CWS-PG给药血清对S180细胞体外增殖的抑制作用 | 第60-63页 |
| 2.1 实验细胞株 | 第60页 |
| 2.2 试剂及仪器 | 第60页 |
| 2.3 方法 | 第60-61页 |
| 2.3.1 细胞培养方法 | 第60-61页 |
| 2.3.2 血清的制备 | 第61页 |
| 2.3.3 给药血清对S180的细胞毒性作用 | 第61页 |
| 2.3.4 血清药理学方法的验证 | 第61页 |
| 2.4 结果与分析 | 第61-63页 |
| 2.4.1 给药血清对S180细胞的毒性作用 | 第61-62页 |
| 2.4.2 血清药理学方法的验证 | 第62-63页 |
| 第三节 小结 | 第63-64页 |
| 第四章 N-CWS-PG对S180实体瘤体内抑制作用研究 | 第64-74页 |
| 1.1 材料 | 第64页 |
| 1.2 实验动物及饲养条件 | 第64页 |
| 1.3 方法 | 第64-67页 |
| 1.3.1 N-CWS-PG酶解液的电泳实验 | 第64-65页 |
| 1.3.2 BALB/C小鼠S180实体瘤动物模型的建立 | 第65页 |
| 1.3.3 实体瘤小鼠的肿瘤抑制率计算 | 第65-66页 |
| 1.3.4 实体瘤小鼠免疫器官指数的测定 | 第66页 |
| 1.3.5 KM小鼠S180实体瘤动物模型的建立 | 第66页 |
| 1.3.6 腹腔巨噬细胞功能测定 | 第66-67页 |
| 1.3.7 N-CWS-PG对腹水瘤小鼠生存质量和生存时间的影响 | 第67页 |
| 1.4 结果与分析 | 第67-72页 |
| 1.4.1 电泳实验 | 第67-68页 |
| 1.4.2 N-CWS-PG对BALB/C小鼠S180实体瘤抑制作用 | 第68-69页 |
| 1.4.3 N-CWS-PG对小鼠实体瘤免疫器官的影响 | 第69页 |
| 1.4.4 腹腔巨噬细胞功能测定 | 第69-70页 |
| 1.4.5 N-CWS-PG对腹水瘤小鼠生存质量和时间的影响 | 第70-72页 |
| 1.5 小结与讨论 | 第72-74页 |
| 第五章 结论与展望 | 第74-76页 |
| 1 结论 | 第74-75页 |
| 2 展望 | 第75-76页 |
| 参考文献 | 第76-82页 |
| 攻读学位期间承担的科研任务与主要成果 | 第82-84页 |
| 致谢 | 第84-86页 |
| 个人简历 | 第86-90页 |
