| 摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 中英文名词术语及缩写对照 | 第8-18页 |
| 第一章 前言 | 第18-29页 |
| 1.1 肿瘤的多药耐药性 | 第18-19页 |
| 1.1.1 肿瘤的多药耐药性 | 第18页 |
| 1.1.2 获得性多药耐药的机理 | 第18-19页 |
| 1.1.3 多药耐药的治疗 | 第19页 |
| 1.2 基因治疗 | 第19-22页 |
| 1.2.1 基因治疗的现状 | 第19-20页 |
| 1.2.2 树状分子PAMAM | 第20-21页 |
| 1.2.3 反义寡聚核苷酸 | 第21-22页 |
| 1.2.4 生存素survivin | 第22页 |
| 1.3 高分子三嵌段聚合物普朗尼克Pluronic | 第22-23页 |
| 1.3.1 Pluronic简介 | 第22-23页 |
| 1.3.2 Pluronic P123用于逆转多药耐药 | 第23页 |
| 1.4 响应性纳米递药系统 | 第23-25页 |
| 1.4.1 响应性纳米递药系统的研究现状 | 第23-24页 |
| 1.4.2 pH响应性纳米递药系统的研究现状 | 第24-25页 |
| 1.4.3 光热响应性的纳米递药系统 | 第25页 |
| 1.5 光动力治疗概述 | 第25-26页 |
| 1.5.1 光动力治疗简介 | 第25页 |
| 1.5.2 光动力治疗的耐药性 | 第25-26页 |
| 1.6 姜黄素的概述 | 第26-27页 |
| 1.6.1 姜黄素的药理活性 | 第26页 |
| 1.6.2 姜黄素的物理化学性质 | 第26-27页 |
| 1.7 选题依据和研究内容 | 第27-29页 |
| 第二章 pH/温度响应的磁性PAMAM纳米复合物的制备与表征 | 第29-51页 |
| 2.1 引言 | 第29-30页 |
| 2.2 仪器和试剂 | 第30-31页 |
| 2.2.1 实验仪器 | 第30-31页 |
| 2.2.2 实验试剂 | 第31页 |
| 2.3 方法与过程 | 第31-38页 |
| 2.3.1 姜黄素分析方法的建立 | 第31-32页 |
| 2.3.2 酞菁锌分析方法的建立 | 第32-33页 |
| 2.3.3 MNP@P-PA/Sur/Cur-ZnPc纳米复合物的制备与表征 | 第33-34页 |
| 2.3.4 P123修饰的磁纳米颗粒的合成与表征 | 第34-35页 |
| 2.3.5 MNP@P-PA/Sur/Cur-ZnPc纳米复合物的制备 | 第35-36页 |
| 2.3.6 MNP@P-PA/Sur/Cur-ZnPc纳米复合物的表征 | 第36-38页 |
| 2.4 结果与讨论 | 第38-50页 |
| 2.4.1 姜黄素分析方法的建立 | 第38-39页 |
| 2.4.2 酞菁锌分析方法的建立 | 第39-40页 |
| 2.4.3 P-PA纳米复合物的表征 | 第40-42页 |
| 2.4.4 MNP-P123纳米粒子的表征 | 第42页 |
| 2.4.5 MNP@P-PA/Sur/Cur-ZnPc纳米复合物的表征 | 第42-50页 |
| 2.5 本章小结 | 第50-51页 |
| 第三章 pH/温度响应的磁性PAMAM纳米复合物体外试验 | 第51-75页 |
| 3.1 引言 | 第51页 |
| 3.2 仪器和试剂 | 第51-53页 |
| 3.2.1 实验仪器 | 第51-52页 |
| 3.2.2 实验试剂抗体 | 第52-53页 |
| 3.2.3 细胞株 | 第53页 |
| 3.3 方法与过程 | 第53-63页 |
| 3.3.1 细胞培养 | 第53-54页 |
| 3.3.2 MCF-7耐药细胞株的诱导及表征 | 第54-56页 |
| 3.3.3 细胞转染与转染效率 | 第56-57页 |
| 3.3.4 细胞内FAM-Sur asON的分布与溶酶体逃逸实验 | 第57页 |
| 3.3.5 近红外光促进细胞摄取 | 第57-58页 |
| 3.3.6 MCF-7/MDR对罗丹明-123的摄取 | 第58页 |
| 3.3.7 细胞内ATP含量的测定 | 第58页 |
| 3.3.8 线粒体膜电位(MMP)的检测 | 第58-59页 |
| 3.3.9 姜黄素对MCF-7/MDR细胞摄取的影响 | 第59页 |
| 3.3.10 姜黄素促进细胞摄取的机制的研究 | 第59-61页 |
| 3.3.11 Survivin寡聚核苷酸对Survivin表达的抑制 | 第61-62页 |
| 3.3.12 细胞内活性氧生成检测(ROS) | 第62页 |
| 3.3.13 细胞毒性实验 | 第62-63页 |
| 3.4 结果与讨论 | 第63-74页 |
| 3.4.1 MCF-7耐药细胞株的表征 | 第63-64页 |
| 3.4.2 细胞转染与转染效率 | 第64-65页 |
| 3.4.3 FAM-asON/MNP@P-PA纳米复合物的细胞分布与溶酶体逃逸 | 第65-66页 |
| 3.4.4 近红外光促进细胞摄取 | 第66-67页 |
| 3.4.5 MCF-7/MDR对罗丹明-123的摄取 | 第67-68页 |
| 3.4.6 MCF-7/MDR细胞内ATP含量的测定 | 第68页 |
| 3.4.7 MCF-7/MDR细胞内线粒体膜电势(MMP)的测定 | 第68-69页 |
| 3.4.8 姜黄素对MCF-7/MDR细胞摄取的影响 | 第69-70页 |
| 3.4.9 用q-PCR和western blot研究姜黄素促进细胞摄取的机制 | 第70-71页 |
| 3.4.10 Survivin寡聚核苷酸对Survivin表达的抑制 | 第71-72页 |
| 3.4.11 细胞内活性氧(ROS)检测 | 第72页 |
| 3.4.12 细胞毒性实验 | 第72-74页 |
| 3.5 本章小结 | 第74-75页 |
| 第四章 pH/温度响应的磁性PAMAM纳米复合物体内试验 | 第75-87页 |
| 4.1 引言 | 第75页 |
| 4.2 仪器和试剂 | 第75-76页 |
| 4.2.1 实验仪器 | 第75-76页 |
| 4.2.2 实验试剂 | 第76页 |
| 4.2.3 实验动物 | 第76页 |
| 4.3 方法与过程 | 第76-80页 |
| 4.3.1 溶血安全性评价 | 第76-77页 |
| 4.3.2 荷MCF-7/MDR瘤裸鼠模型的建立 | 第77-78页 |
| 4.3.3 红外成像仪检测肿瘤的局部升温 | 第78页 |
| 4.3.4 小动物活体荧光成像 | 第78页 |
| 4.3.5 体内磁共振成像 | 第78-79页 |
| 4.3.6 体内抗肿瘤试验 | 第79页 |
| 4.3.7 病理学组织切片染色 | 第79-80页 |
| 4.4 结果与讨论 | 第80-86页 |
| 4.4.1 溶血安全性评价 | 第80-81页 |
| 4.4.2 红外成像仪检测肿瘤的局部升温 | 第81-82页 |
| 4.4.3 小动物活体荧光成像 | 第82-83页 |
| 4.4.4 体内磁共振成像 | 第83-84页 |
| 4.4.5 体内抗肿瘤试验 | 第84-85页 |
| 4.4.6 病理学组织切片染色 | 第85-86页 |
| 4.5 本章小结 | 第86-87页 |
| 第五章 结论与展望 | 第87-89页 |
| 5.1 全文结论 | 第87-88页 |
| 5.2 创新之处 | 第88页 |
| 5.3 展望 | 第88-89页 |
| 参考文献 | 第89-95页 |
| 致谢 | 第95-96页 |
| 附录 | 第96页 |
