| 摘要 | 第6-7页 |
| ABSTRACT | 第7-8页 |
| 第一章 文献综述 | 第11-28页 |
| 1.1 分子标记研究进展 | 第11-16页 |
| 1.1.1 微卫星简介 | 第11-12页 |
| 1.1.2 微卫星的演变:SSR变异的突变机理 | 第12-13页 |
| 1.1.3 SSRs在基因中的分布及影响 | 第13-14页 |
| 1.1.4 微卫星标记的发展 | 第14-16页 |
| 1.2 植物矮生基因研究进展 | 第16-22页 |
| 1.2.1 小麦矮生基因研究进展 | 第16-18页 |
| 1.2.2 水稻矮生基因研究进展 | 第18-19页 |
| 1.2.3 玉米矮生基因研究进展 | 第19-20页 |
| 1.2.4 大麦矮生基因研究进展 | 第20-21页 |
| 1.2.5 甘蓝型油菜矮生基因研究进展 | 第21页 |
| 1.2.6 黄瓜矮生基因研究进展 | 第21-22页 |
| 1.2.7 其他植物矮生基因研究进展 | 第22页 |
| 1.3 黄瓜基因定位研究进展 | 第22-26页 |
| 1.3.1 控制β胡萝卜素含量的基因定位 | 第22-23页 |
| 1.3.2 果刺、果瘤及果皮颜色等基因定位 | 第23-24页 |
| 1.3.3 黄瓜性型决定基因及苦味基因的定位 | 第24-25页 |
| 1.3.4 抗病相关基因定位 | 第25-26页 |
| 1.4 目的及意义 | 第26-28页 |
| 第二章 材料和方法 | 第28-36页 |
| 2.1 材料 | 第28-29页 |
| 2.1.1 供试材料 | 第28页 |
| 2.1.2 DNA提取及聚丙烯酰胺凝胶电泳试剂 | 第28页 |
| 2.1.3 培养基及质粒提取试剂 | 第28-29页 |
| 2.1.4 感受态、载体及酶 | 第29页 |
| 2.2 方法 | 第29-36页 |
| 2.2.1 田间性状调查 | 第29页 |
| 2.2.2 定位群体的构建 | 第29页 |
| 2.2.3 黄瓜基因组DNA的提取方法 | 第29-30页 |
| 2.2.4 PCR反应及程序 | 第30-31页 |
| 2.2.5 聚丙烯酰胺凝胶电泳 | 第31-32页 |
| 2.2.6 PCR产物的克隆和测序 | 第32-34页 |
| 2.2.7 酶切反应 | 第34-35页 |
| 2.2.8 SSR,STS及CAPS等分子标记的开发 | 第35页 |
| 2.2.9 数据统计与连锁分析 | 第35-36页 |
| 第三章 结果与分析 | 第36-48页 |
| 3.1 cp基因的遗传规律分析 | 第36-37页 |
| 3.2 在WI7201×WI7200 F_2群体中cp基因的精细定位 | 第37-44页 |
| 3.2.1 WI7201×WI7200 F_2群体重组交换单株的筛选 | 第37页 |
| 3.2.2 WI7201和WI7200亲本间SSR多态性标记的筛选 | 第37-42页 |
| 3.2.3 cp基因连锁的SSR标记 | 第42页 |
| 3.2.4 cp基因连锁的STS标记 | 第42-43页 |
| 3.2.5 新开发的标记与矮生基因cp的连锁关系 | 第43-44页 |
| 3.3 在WI7201×CCMC F_2群体中cp基因的精细定位 | 第44-46页 |
| 3.3.1 WI7201×CCMC F2群体交换单株筛选 | 第44页 |
| 3.3.2 WI7201和CCMC亲本间SSR多态性引物的筛选及新标记的开发 | 第44-45页 |
| 3.3.3 新开发的标记与矮生基因cp的连锁关系 | 第45-46页 |
| 3.4 cp基因在2个作图群体中的定位比较 | 第46-47页 |
| 3.5 cp候选基因预测 | 第47-48页 |
| 第四章 讨论 | 第48-51页 |
| 4.1 SSR标记在基因定位中的应用 | 第48页 |
| 4.2 cp基因的精细定位 | 第48-50页 |
| 4.3 候选基因ER | 第50-51页 |
| 第五章 结论 | 第51-52页 |
| 5.1 WI7201×WI7200 F2群体的定位 | 第51页 |
| 5.2 WI7201×CCMC F2分离群体的定位 | 第51页 |
| 5.3 候选基因的预测 | 第51-52页 |
| 参考文献 | 第52-63页 |
| 致谢 | 第63-64页 |
| 作者简介 | 第64页 |
