| 中文摘要 | 第4-6页 |
| Abstract | 第6-7页 |
| 缩略语/符号说明 | 第11-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 一、巨噬细胞表面EGFR活化对M2极化的影响 | 第15-47页 |
| 1.1 对象和方法 | 第15-33页 |
| 1.1.1 实验材料 | 第15-16页 |
| 1.1.2 小鼠RAW264.7巨噬细胞培养 | 第16-17页 |
| 1.1.3 动物饲养及管理 | 第17页 |
| 1.1.4 Egfr~(fl/fl)LysM-Cre小鼠培育 | 第17-18页 |
| 1.1.5 Egfr~(fl/fl)LysM-Cre小鼠基因分型鉴定 | 第18-21页 |
| 1.1.6 小鼠腹腔Chitin注射 | 第21页 |
| 1.1.7 小鼠腹腔巨噬细胞收集及培养 | 第21-22页 |
| 1.1.8 细胞系及腹腔巨噬细胞Western blot | 第22-28页 |
| 1.1.9 细胞系及腹腔巨噬细胞Real-Time PCR | 第28-31页 |
| 1.1.10 小鼠腹腔巨噬细胞Flow Cytometry | 第31页 |
| 1.1.11 细胞系及腹腔巨噬细胞HB-EGF ELISA检测 | 第31-32页 |
| 1.1.12 统计学方法 | 第32-33页 |
| 1.2 结果 | 第33-43页 |
| 1.2.1 巨噬细胞EGFR可被IL-4激活并抑制巨噬细胞M2表型极化 | 第33-39页 |
| 1.2.2 EGFR活化可抑制Chitin对巨噬细胞的募集及M2表型极化 | 第39-41页 |
| 1.2.3 抑制巨噬细胞表面EGFR活性可上调HB-EGF分泌水平 | 第41-43页 |
| 1.3 讨论 | 第43-45页 |
| 1.3.1 EGFR的结构特点 | 第43-44页 |
| 1.3.2 EGFR的生物学功能 | 第44-45页 |
| 1.4 小结 | 第45-47页 |
| 二、巨噬细胞表面EGFR活化对胃上皮细胞增殖及EMT的影响 | 第47-57页 |
| 2.1 对象和方法 | 第47-49页 |
| 2.1.1 ImSt及Egfr~(~(-/-))ImSt细胞培养 | 第47页 |
| 2.1.2 MTT实验 | 第47-48页 |
| 2.1.3 Real-Time PCR | 第48页 |
| 2.1.4 统计学方法 | 第48-49页 |
| 2.2 结果 | 第49-52页 |
| 2.2.1 巨噬细胞IL-4条件培养基通过上皮细胞表面EGFR刺激其增殖及EMT | 第49-51页 |
| 2.2.2 巨噬细胞表面EGFR活化抑制IL-4条件培养基对上皮细胞的增殖及EMT的影响 | 第51-52页 |
| 2.3 讨论 | 第52-56页 |
| 2.3.1 IL-4及IL-13的产生 | 第52-54页 |
| 2.3.2 肿瘤相关巨噬细胞的来源及功能 | 第54-56页 |
| 2.4 小结 | 第56-57页 |
| 三、巨噬细胞EGFR活化对结肠上皮细胞增殖及EMT的影响 | 第57-67页 |
| 3.1 对象和方法 | 第57-60页 |
| 3.1.1 IMCE~(ras)细胞集落形成实验 | 第57页 |
| 3.1.2 Rag2~(-/-)小鼠IMCE~(ras)细胞移植瘤实验 | 第57-58页 |
| 3.1.3 小鼠移植瘤Ki67免疫组化染色 | 第58-59页 |
| 3.1.4 小鼠结肠移植瘤组织Real-Time PCR | 第59-60页 |
| 3.1.5 统计学方法 | 第60页 |
| 3.2 结果 | 第60-63页 |
| 3.2.1 巨噬细胞表面EGFR活化抑制IMCE~(ras)细胞集落形成及EMT | 第60-61页 |
| 3.2.2 巨噬细胞表面EGFR活化抑制IMCE~(ras)细胞移植瘤形成 | 第61-63页 |
| 3.3 讨论 | 第63-66页 |
| 3.4 小结 | 第66-67页 |
| 全文结论 | 第67-68页 |
| 论文创新点 | 第68-69页 |
| 参考文献 | 第69-77页 |
| 发表论文和参加科研情况说明 | 第77-78页 |
| 综述 肿瘤相关巨噬细胞与JAK/STAT信号通路 | 第78-107页 |
| 综述参考文献 | 第95-107页 |
| 致谢 | 第107-108页 |
| 个人简历 | 第108页 |
