| 致谢 | 第4-7页 |
| 摘要 | 第7-9页 |
| 1 文献综述 | 第9-15页 |
| 1.1 花色素苷简介 | 第9-10页 |
| 1.2 活性氧参与植物细胞调控 | 第10-11页 |
| 1.2.1 活性氧的产生与清除 | 第10-11页 |
| 1.2.2 活性氧与植物的抗逆性 | 第11页 |
| 1.2.3 活性氧与花色素苷的合成 | 第11页 |
| 1.3 逆境胁迫与花色素苷的合成 | 第11-12页 |
| 1.4 NADPH氧化酶研究进展 | 第12-13页 |
| 1.5 四季秋海棠简介 | 第13-14页 |
| 1.6 本文研究目的与意义 | 第14-15页 |
| 2 引言 | 第15-16页 |
| 3 材料与方法 | 第16-22页 |
| 3.1 试验材料及处理 | 第16-17页 |
| 3.1.1 试验材料 | 第16页 |
| 3.1.2 材料处理 | 第16-17页 |
| 3.2 试验方法 | 第17-22页 |
| 3.2.1 RNA提取、文库构建和测序 | 第17页 |
| 3.2.2 质量控制、转录组测序和基因功能注释 | 第17-18页 |
| 3.2.3 基因表达及注释 | 第18页 |
| 3.2.4 NADPH氧化酶基因序列的生物信息学分析 | 第18-19页 |
| 3.2.5 RNA的提取与cDNA的合成 | 第19页 |
| 3.2.6 实时荧光定量PCR反应与基因表达分析 | 第19-20页 |
| 3.2.7 花色素苷含量测定 | 第20页 |
| 3.2.8 H_2O_2含量测定 | 第20-21页 |
| 3.2.9 超氧自由基(O_2~(.-))含量测定 | 第21页 |
| 3.2.10 叶绿素含量的测定 | 第21页 |
| 3.2.11 组织化学染色 | 第21页 |
| 3.2.12 数据分析 | 第21-22页 |
| 4 结果与分析 | 第22-42页 |
| 4.1 转录组测序结果分析 | 第22-32页 |
| 4.1.1 转录组测序与组装结果分析 | 第22-23页 |
| 4.1.2 转录组测序数据功能注释 | 第23-24页 |
| 4.1.3 差异表达基因分析 | 第24-26页 |
| 4.1.4 KEGG通路富集结果分析 | 第26-28页 |
| 4.1.5 苯丙素生物合成和类黄酮生物合成途径中差异基因的分析 | 第28-32页 |
| 4.2 四季秋海棠BsRbohD基因的生物信息学分析 | 第32-35页 |
| 4.2.1 四季秋海棠BsRbohD的进化分析 | 第32-34页 |
| 4.2.2 四季秋海棠BsRbohD的氨基酸理化性质、结构和功能分析 | 第34-35页 |
| 4.3 低温处理不同时间点BsRbohD基因及花色素苷相关基因表达量的变化 | 第35-37页 |
| 4.3.1 低温处理初始时间BsRbohD基因及花色素苷相关基因的表达量的变化 | 第35-36页 |
| 4.3.2 低温处理持续过程中BsRbohD基因及花色素苷相关基因的表达量的变化 | 第36-37页 |
| 4.4 不同处理下四季秋海棠叶片活性氧含量、花色素苷含量及相关基因表达量的变化 | 第37-42页 |
| 4.4.1 不同处理下叶片活性氧含量、产生速率的变化 | 第37-38页 |
| 4.4.2 不同处理下叶片花色素苷、叶绿素含量的变化 | 第38-39页 |
| 4.4.3 不同处理条件下叶片BsRbohD及花色素苷相关基因的表达量的变化 | 第39-40页 |
| 4.4.4 不同处理下诱导花色素苷合成的机理分析 | 第40-42页 |
| 5 结论与讨论 | 第42-44页 |
| 参考文献 | 第44-52页 |
| 英文摘要 | 第52-53页 |
