| 中文摘要 | 第1-10页 |
| Abstract | 第10-12页 |
| 第一章 文献综述 | 第12-27页 |
| 1. 韭菜常见病虫害及常用杀虫剂 | 第12-14页 |
| ·韭菜常见病虫害 | 第12页 |
| ·韭菜常用杀虫剂 | 第12-14页 |
| ·毒死蜱简介 | 第12-13页 |
| ·毒死蜱的应用概况 | 第13-14页 |
| ·毒死蜱在应用中存在的问题 | 第14页 |
| 2. 常用杀虫剂的残留问题 | 第14-16页 |
| ·韭菜农药残留严重的原因 | 第14-15页 |
| ·毒死蜱的残留问题 | 第15-16页 |
| ·毒死蜱在植物中的残留 | 第15页 |
| ·毒死蜱在土壤中的残留 | 第15-16页 |
| 3. 毒死蜱微生物降解的研究进展 | 第16-21页 |
| ·毒死蜱的降解机制 | 第16页 |
| ·微生物对毒死蜱的降解 | 第16-17页 |
| ·毒死蜱降解菌的研究进展 | 第17-18页 |
| ·国外毒死蜱降解菌的研究进展 | 第17页 |
| ·国内毒死蜱降解菌的研究进展 | 第17-18页 |
| ·毒死蜱微生物降解的研究现状及发展方向 | 第18-20页 |
| ·毒死蜱微生物降解的研究现状 | 第18页 |
| ·毒死蜱微生物降解的发展方向 | 第18-20页 |
| ·内生菌在生物修复方面的研究进展 | 第20-21页 |
| ·植物内生降解菌的研究 | 第20-21页 |
| ·内生细菌原位修复的优势 | 第21页 |
| 4. 有机磷农药降解基因的克隆 | 第21-24页 |
| ·opd | 第22页 |
| ·opdA | 第22-23页 |
| ·adpB | 第23页 |
| ·mpd | 第23页 |
| ·oph | 第23-24页 |
| ·hocA | 第24页 |
| ·ophc2 | 第24页 |
| ·opaA | 第24页 |
| 5. 本研究的立题依据、研究内容及技术路线 | 第24-27页 |
| ·立题依据 | 第24-25页 |
| ·研究内容 | 第25-26页 |
| ·技术路线 | 第26-27页 |
| 第二章 韭菜内生农药降解生防细菌的分离与鉴定 | 第27-46页 |
| 1. 材料与方法 | 第27-34页 |
| ·实验材料 | 第27-29页 |
| ·菌株来源 | 第27页 |
| ·供试病原菌 | 第27页 |
| ·仪器设备 | 第27-28页 |
| ·培养基 | 第28-29页 |
| ·主要试剂 | 第29页 |
| ·实验方法 | 第29-34页 |
| ·韭菜内生细菌的分离与保藏 | 第29页 |
| ·农药降解菌的筛选 | 第29-30页 |
| ·内生细菌对高效氯氰菊酯的降解作用 | 第30-31页 |
| ·菌株W7 的生物防治作用 | 第31页 |
| ·菌株W7 抑菌机制研究 | 第31-32页 |
| ·菌落形态和生理生化鉴定 | 第32页 |
| ·菌种分子生物学鉴定 | 第32-34页 |
| 2. 结果与分析 | 第34-44页 |
| ·韭菜内生农药降解细菌的分离 | 第34-35页 |
| ·菌株W7 对高效氯氰菊酯的降解作用 | 第35-36页 |
| ·高效氯氰菊酯标准曲线的制作 | 第35页 |
| ·紫外分光光度法检测高效氯氰菊酯的回收率 | 第35-36页 |
| ·菌株的生长曲线和高效氯氰菊酯降解曲线 | 第36页 |
| ·菌株W7 的生物防治作用 | 第36-41页 |
| ·菌株W7 对病原真菌的抑菌作用 | 第36-39页 |
| ·菌株W7 的抑菌机制研究 | 第39-41页 |
| ·菌种鉴定 | 第41-44页 |
| ·形态及生理生化特征 | 第41-42页 |
| ·菌株W7 的分子鉴定 | 第42-44页 |
| 3. 讨论 | 第44-46页 |
| ·韭菜优势内生细菌的筛选 | 第44页 |
| ·菌株W7 对高效氯氰菊酯的降解作用 | 第44-45页 |
| ·韭菜内生细菌的生防机制 | 第45页 |
| ·创新点 | 第45-46页 |
| 第三章 毒死蜱高效降解菌的分离与鉴定 | 第46-59页 |
| 1. 材料与方法 | 第46-50页 |
| ·实验材料 | 第46-47页 |
| ·菌株来源 | 第46页 |
| ·培养基 | 第46-47页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第47页 |
| ·实验方法 | 第47-50页 |
| ·毒死蜱降解菌的分离与保藏 | 第47-48页 |
| ·液体培养基中毒死蜱的提取及测定 | 第48-49页 |
| ·菌株D10 的生长曲线和降解曲线的测定 | 第49-50页 |
| ·菌种鉴定 | 第50页 |
| 2. 结果与分析 | 第50-56页 |
| ·土壤中毒死蜱降解细菌的筛选 | 第50-51页 |
| ·紫外分光光度法测定毒死蜱浓度 | 第51-52页 |
| ·标准曲线 | 第51页 |
| ·紫外分光光度法检测毒死蜱的回收率 | 第51-52页 |
| ·菌株D10 的生长曲线及毒死蜱降解曲线 | 第52-53页 |
| ·菌株D10 菌落形态和生理生化鉴定 | 第53页 |
| ·菌落形态 | 第53页 |
| ·生理生化特征 | 第53页 |
| ·菌株D10 的分子鉴定 | 第53-56页 |
| ·菌株D10 基因组DNA 的提取 | 第53-54页 |
| ·菌株D10 16S rDNA 序列的克隆 | 第54页 |
| ·16S rDNA 序列测定 | 第54-56页 |
| 3. 讨论 | 第56-59页 |
| ·高效降解菌株的筛选意义和筛选依据 | 第56-57页 |
| ·紫外分光光度法的可靠性分析 | 第57页 |
| ·细菌鉴定 | 第57-58页 |
| ·创新点 | 第58-59页 |
| 第四章 毒死蜱降解菌的降解特性及其降解酶基因的克隆 | 第59-77页 |
| 1. 材料与方法 | 第59-65页 |
| ·实验材料 | 第59-60页 |
| ·培养基 | 第59页 |
| ·主要仪器和试剂 | 第59-60页 |
| ·实验方法 | 第60-65页 |
| ·培养条件对D10 生长量和毒死蜱降解率的影响 | 第60-61页 |
| ·菌株D10 毒死蜱降解酶的研究 | 第61-63页 |
| ·毒死蜱降解菌对土壤中毒死蜱的降解[42] | 第63-64页 |
| ·降解毒死蜱相关基因定位的初步研究 | 第64-65页 |
| 2. 结果与分析 | 第65-75页 |
| ·培养条件对菌株D10 生长量和降解率的影响 | 第65-69页 |
| ·外加碳源对D10 生长量和降解率的影响 | 第65-66页 |
| ·温度对D10 生长量和降解率的影响 | 第66-67页 |
| ·初始pH 值对D10 生长量和降解率的影响 | 第67页 |
| ·初始接菌量对D10 生长量和降解率的影响 | 第67-68页 |
| ·底物浓度对D10 生长量和降解率的影响 | 第68-69页 |
| ·毒死蜱降解酶降解特性研究 | 第69-73页 |
| ·毒死蜱降解酶的定位 | 第69-70页 |
| ·温度对毒死蜱酶促降解的影响 | 第70-71页 |
| ·pH 对毒死蜱酶促降解的影响 | 第71-72页 |
| ·毒死蜱降解酶的热稳定性 | 第72-73页 |
| ·毒死蜱降解酶的pH 稳定性 | 第73页 |
| ·菌株D10 对土壤中毒死蜱的降解作用 | 第73-74页 |
| ·降解毒死蜱相关基因定位的初步研究 | 第74-75页 |
| ·菌株D10 的质粒提取 | 第74页 |
| ·mpd 基因的PCR 扩增 | 第74-75页 |
| 3. 讨论 | 第75-77页 |
| ·环境影响因子对微生物降解的影响 | 第75页 |
| ·微生物对毒死蜱的代谢方式 | 第75-76页 |
| ·关于毒死蜱降解菌降解能力存在差异的讨论 | 第76-77页 |
| 第五章 结论 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-88页 |
| 致谢 | 第88-89页 |
| 攻读学位期间发表论文情况 | 第89页 |