| 摘要 | 第4-7页 |
| Abstract | 第7-9页 |
| 英文缩写对照 | 第12-13页 |
| 前言 | 第13-15页 |
| 第一部分 丙烯酰胺对大鼠脑神经元凋亡的影响 | 第15-30页 |
| 1 材料与仪器 | 第15-19页 |
| 1.1 主要实验试剂 | 第15-16页 |
| 1.2 主要试剂的配制 | 第16-18页 |
| 1.3 实验仪器 | 第18-19页 |
| 2 方法 | 第19-23页 |
| 2.1 动物处理 | 第19-20页 |
| 2.2 灌流固定脑组织 | 第20页 |
| 2.3 取脑 | 第20页 |
| 2.4 脑组织匀浆提取蛋白 | 第20页 |
| 2.5 石蜡包埋切片 | 第20-21页 |
| 2.6 TUNEL 免疫荧光 | 第21页 |
| 2.7 Western blot 分析 | 第21-23页 |
| 2.8 统计学分析 | 第23页 |
| 3 结果 | 第23-28页 |
| 3.1 大鼠体重及活动情况 | 第23-24页 |
| 3.2 Tunel 法检测大鼠脑神经细胞凋亡 | 第24-26页 |
| 3.3 ACR 对大鼠脑神经元凋亡相关蛋白以及 TERT 表达的影响 | 第26-28页 |
| 4 讨论 | 第28-30页 |
| 第二部分 丙烯酰胺对大鼠脑皮层细胞凋亡、增殖、氧化应激以及 TERT 表达的影响 | 第30-45页 |
| 1 材料与仪器 | 第30-32页 |
| 1.1 实验试剂 | 第30-31页 |
| 1.2 溶液试剂配制 | 第31页 |
| 1.3 实验所需仪器 | 第31-32页 |
| 2 方法 | 第32-37页 |
| 2.1 原代海马细胞的分离及培养 | 第32页 |
| 2.2 MTT 实验 | 第32-33页 |
| 2.3 流式细胞术（FCM）检测细胞凋亡 | 第33页 |
| 2.4 Western blot 检测 | 第33-34页 |
| 2.5 ROS 检测 | 第34页 |
| 2.6 Real-Time PCR | 第34-36页 |
| 2.7 SOD、MDA、GSH 和 GSH-PX 检测 | 第36页 |
| 2.8 TRAP－PCR 银染法端粒酶活性检测 | 第36页 |
| 2.9 统计学分析 | 第36-37页 |
| 3 结果 | 第37-43页 |
| 3.1 ACR 对大鼠神经元细胞增殖及凋亡的影响 | 第37-39页 |
| 3.2 ACR 对大鼠神经元皮层细胞中活性氧含量、线粒体中 SOD、MDA、GSH 和GSH-PX 表达的影响 | 第39-40页 |
| 3.3 丙烯酰胺对大鼠脑神经元细胞 CLEAVED CASPASE-3 和 BCL-2 表达的影响 | 第40-41页 |
| 3.4 丙烯酰胺对大鼠神经元细胞 TERT 表达的影响 | 第41-43页 |
| 4 讨论 | 第43-45页 |
| 参考文献 | 第45-48页 |
| 致谢 | 第48-49页 |
| 附录1 攻读硕士学位期间发表的论文 | 第49-50页 |
| 附录2 攻读硕士学位期间参加的科研项目 | 第50页 |
