| 中文摘要 | 第4-9页 |
| Abstract | 第9-14页 |
| 英文缩略语 | 第15-19页 |
| 第一部分 ：PAX2基因诱导NRK52E细胞上皮-间充质转化模型的建立 | 第19-40页 |
| 1 前言 | 第19-20页 |
| 2 材料 | 第20-33页 |
| 2.1 实验仪器与试剂 | 第20-22页 |
| 2.1.1 仪器 | 第20-21页 |
| 2.1.2 试剂 | 第21-22页 |
| 2.2 实验方法 | 第22-33页 |
| 2.2.1 实验对象及分组 | 第22页 |
| 2.2.2 过表达慢病毒载体构建 | 第22-33页 |
| 3 结果 | 第33-38页 |
| 3.1 LV-PAX2及LV-con转染NRK-52E细胞后细胞形态改变 | 第33-35页 |
| 3.2 通过Real-TimePCR方法检测细胞转染后PAX2mRNA表达情况 | 第35-36页 |
| 3.3 通过WesternBlot检测细胞转染后PAX2蛋白表达情况 | 第36页 |
| 3.4 通过WesternBlot检测细胞转染后EMT相关蛋白E-cadherin、a-SMA的表达情况 | 第36-37页 |
| 3.5 通过细胞划痕实验观察PAX2基因对NRK-52E细胞运动迁移的影响 | 第37-38页 |
| 4 讨论 | 第38-39页 |
| 5 结论 | 第39-40页 |
| 第二部分 ：过表达PAX2基因的NRK-52E细胞系的差异mRNA表达谱的筛选 | 第40-56页 |
| 1 前言 | 第40-41页 |
| 2 材料与方法 | 第41-46页 |
| 2.1 基因表达谱芯片 | 第41页 |
| 2.2 慢病毒过表达载体 | 第41页 |
| 2.3 实验对象 | 第41页 |
| 2.4 主要试剂 | 第41-42页 |
| 2.5 主要仪器 | 第42-43页 |
| 2.6 实验方法 | 第43-45页 |
| 2.7 统计学分析 | 第45-46页 |
| 3 结果 | 第46-53页 |
| 3.1 LV-PAX2及LV-con转染NRK-52E细胞 | 第46页 |
| 3.2 通过表达谱芯片RatOneArrayPlus对转染后细胞进行差异基因表达谱筛选 | 第46-48页 |
| 3.3 以KEGG、Biocarta及GO数据库为基础对差异基因的分析结果 | 第48-53页 |
| 3.3.1 KEGG及Biocarta富集分析排位,前10位通路 | 第48-50页 |
| 3.3.2 GO富集分析排位,前10位通路 | 第50-53页 |
| 4 讨论 | 第53-55页 |
| 5 结论 | 第55-56页 |
| 第三部分 ：补体相关差异基因在细胞学水平及UUO大鼠肾脏水平的验证 | 第56-81页 |
| 1 前言 | 第56页 |
| 2 材料与方法 | 第56-65页 |
| 2.1 实验对象 | 第56-57页 |
| 2.1.1 细胞 | 第56-57页 |
| 2.1.2 动物 | 第57页 |
| 2.2 试剂 | 第57页 |
| 2.3 主要仪器 | 第57-58页 |
| 2.4 实验方法 | 第58-64页 |
| 2.5 肾间质纤维化指数的计算 | 第64-65页 |
| 2.6 统计学分析 | 第65页 |
| 3 结果 | 第65-77页 |
| 3.1 补体相关差异基因在过表达PAX2基因的NRK-52E细胞水平的验证 | 第65-68页 |
| 3.1.1 LV-PAX2及LV-con转染NRK-52E细胞 | 第65-68页 |
| 3.2 补体相关差异基因在UUO大鼠肾脏水平的验证 | 第68-77页 |
| 4 讨论 | 第77-80页 |
| 5 结论 | 第80-81页 |
| 本研究的创新性自我评价 | 第81-82页 |
| 参考文献 | 第82-85页 |
| 综述 | 第85-96页 |
| 参考文献 | 第91-96页 |
| 在学期间科研成绩 | 第96-97页 |
| 个人简介 | 第97页 |
