| 英文缩写词表 | 第4-5页 |
| 摘要 | 第5-8页 |
| Abstract | 第8-11页 |
| 第一章 Toll样受体5的研究进展 | 第15-23页 |
| 1 Toll样受体的种类及其功能 | 第15-16页 |
| 2 TLR5的结构特点及配体识别 | 第16-19页 |
| 3 TLR5的信号传导通路 | 第19-21页 |
| 4 TLR5的研究现状 | 第21页 |
| 5 本研究的目的意义 | 第21-23页 |
| 第二章 番鸭TLR5基因的克隆及其分子特征分析 | 第23-40页 |
| 1 材料 | 第23-24页 |
| 1.1 实验动物 | 第23页 |
| 1.2 主要试剂 | 第23-24页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第24页 |
| 2 方法 | 第24-28页 |
| 2.1 番鸭TLR5基因全长的扩增 | 第24-28页 |
| 2.2 番鸭TLR5基因及编码产物的分子特征分析 | 第28页 |
| 3 结果 | 第28-37页 |
| 3.1 番鸭TLR5基因全长的扩增及序列分析 | 第28-32页 |
| 3.2 番鸭TLR5基因及其编码产物的分子特征分析 | 第32-37页 |
| 4 讨论 | 第37-39页 |
| 5 小结 | 第39-40页 |
| 第三章 鸭TLR5基因荧光定量RT-PCR方法的建立及组织定量表达分布研究 | 第40-49页 |
| 1 材料 | 第40-41页 |
| 1.1 实验动物 | 第41页 |
| 1.2 主要试剂 | 第41页 |
| 1.3 主要仪器设备 | 第41页 |
| 2 方法 | 第41-44页 |
| 2.1 鸭TLR5基因荧光定量RT-PCR方法的建立 | 第41-43页 |
| 2.2 鸭不同组织器官TLR5基因的表达分布研究 | 第43-44页 |
| 3 结果 | 第44-47页 |
| 3.1 鸭TLR5基因荧光定量RT-PCR方法的建立 | 第44-46页 |
| 3.2 鸭不同组织器官中TLR5 mRNA定量表达的测定 | 第46-47页 |
| 4 讨论 | 第47-48页 |
| 5 小结 | 第48-49页 |
| 第四章 基因定量表达分析中稳定内参基因的筛选 | 第49-66页 |
| 1 材料 | 第49-50页 |
| 1.1 菌株 | 第49页 |
| 1.2 实验动物 | 第49-50页 |
| 1.3 主要试剂 | 第50页 |
| 1.4 主要仪器设备 | 第50页 |
| 2 方法 | 第50-54页 |
| 2.1 内参基因荧光定量RT-PCR方法的建立 | 第50-52页 |
| 2.2 鸭源大肠杆菌菌液的制备及感染 | 第52-53页 |
| 2.3 鸭感染组织中稳定内参基因的筛选 | 第53-54页 |
| 3 结果 | 第54-63页 |
| 3.1 内参基因荧光定量RT-PCR方法的建立 | 第54-59页 |
| 3.2 鸭源大肠杆菌的菌液制备及感染结果 | 第59-60页 |
| 3.3 内参基因的稳定性评价及所需内参基因数目的确定 | 第60-63页 |
| 4 讨论 | 第63-65页 |
| 5. 小结 | 第65-66页 |
| 第五章 大肠杆菌诱导鸭TLR5及相关炎性细胞因子应答的研究 | 第66-90页 |
| 1 材料 | 第66-67页 |
| 1.1 菌株 | 第66页 |
| 1.2 实验动物 | 第66-67页 |
| 1.3 主要试剂 | 第67页 |
| 1.4 主要仪器设备 | 第67页 |
| 2 方法 | 第67-70页 |
| 2.1 TNF-α、IL-1β和IL-6荧光定量RT-PCR方法的建立 | 第67-69页 |
| 2.2 细菌感染及样本采集 | 第69页 |
| 2.3 大肠杆菌诱导鸭TLR5及相关炎性细胞因子应答的研究 | 第69页 |
| 2.4 组织病理学检测 | 第69-70页 |
| 3 结果 | 第70-87页 |
| 3.1 TNF-α、IL-1β和IL-6荧光定量RT-PCR方法的建立 | 第70-73页 |
| 3.2 TLR5、TNF-α、IL-1β和IL-6基因mRNA动态表达量的测定 | 第73-81页 |
| 3.3 组织病理学分析 | 第81-87页 |
| 4 讨论 | 第87-89页 |
| 5 小结 | 第89-90页 |
| 第六章 鸭TLR5介导的抗炎性信号传导机制的研究 | 第90-109页 |
| 1 材料 | 第90-91页 |
| 1.1 菌株 | 第90页 |
| 1.2 实验动物 | 第90页 |
| 1.3 主要试剂 | 第90-91页 |
| 1.4 主要仪器设备 | 第91页 |
| 2 方法 | 第91-94页 |
| 2.1 鞭毛蛋白分子结构相似性分析 | 第91-92页 |
| 2.2 鸭外周血单核细胞的制备 | 第92页 |
| 2.3 鞭毛蛋白最佳刺激浓度测定 | 第92页 |
| 2.4 MyD88、NF-κB荧光定量RT-PCR方法的建立 | 第92-93页 |
| 2.5 鞭毛蛋白刺激下TLR5及其抗炎信号传导机制的研究 | 第93-94页 |
| 3 结果 | 第94-107页 |
| 3.1 大肠杆菌和沙门氏菌鞭毛蛋白分子结构相似性分析 | 第94-99页 |
| 3.2 鞭毛蛋白最佳刺激浓度 | 第99-100页 |
| 3.3 MyD88、NF-κB荧光定量RT-PCR方法的建立 | 第100-103页 |
| 3.4 鞭毛蛋白刺激后TLR5、MyD88、NF-κB、TNF-α、IL-1β、IL-6基因mRNA动态表达量的测定 | 第103-107页 |
| 4 讨论 | 第107-108页 |
| 5 小结 | 第108-109页 |
| 第七章 结论 | 第109-110页 |
| 本研究的创新点 | 第110-111页 |
| 参考文献 | 第111-117页 |
| 致谢 | 第117-118页 |
| 攻读学位期间发表的学术论文目录 | 第118页 |
