摘要 | 第3-4页 |
abstract | 第4-5页 |
1 引言 | 第13-33页 |
1.1 植物是生产者 | 第13页 |
1.2 钙信号 | 第13-21页 |
1.2.1 钙离子的储存和运输 | 第14页 |
1.2.2 定位在液泡上的钙转运蛋白家族 | 第14-15页 |
1.2.3 钙信号的识别 | 第15-17页 |
1.2.4 钙信号与植物生长发育 | 第17-19页 |
1.2.5 CBP60家族简介 | 第19-21页 |
1.3 钙信号、SA和ET在植物免疫系统中的作用 | 第21-25页 |
1.3.1 植物的免疫系统 | 第21-22页 |
1.3.2 钙信号在植物免疫系统中的作用 | 第22-24页 |
1.3.3 水杨酸在植物免疫系统中的作用 | 第24-25页 |
1.3.4 乙烯在植物免疫系统中的作用 | 第25页 |
1.4 钙信号、激素调控拟南芥花青素合成 | 第25-30页 |
1.4.1 花青素及其合成途径 | 第25-27页 |
1.4.2 花青素合成调控与MBW复合体 | 第27页 |
1.4.3 PAP1在调控花青素合成过程中的作用 | 第27-28页 |
1.4.4 多种激素共同调节拟南芥花青素合成 | 第28-30页 |
1.4.5 钙信号在花青素合成过程中的作用 | 第30页 |
1.5 糖信号调控植物生长发育以及花青素合成 | 第30-32页 |
1.5.1 糖简介 | 第30-31页 |
1.5.2 蔗糖代谢履行信号分子功能机制 | 第31-32页 |
1.5.3 糖信号促进花青素的合成 | 第32页 |
1.6 研究的目的与意义 | 第32-33页 |
2 实验材料和方法 | 第33-48页 |
2.1 实验材料 | 第33-37页 |
2.1.1 植物材料 | 第33页 |
2.1.2 菌株和质粒 | 第33页 |
2.1.3 实验相关试剂 | 第33-36页 |
2.1.4 主要仪器 | 第36-37页 |
2.2 实验方法 | 第37-48页 |
2.2.1 植物的培养 | 第37-38页 |
2.2.3 提取拟南芥基因组DNA | 第38页 |
2.2.4 拟南芥总RNA的提取 | 第38-39页 |
2.2.5 反转录 | 第39-40页 |
2.2.6 实时定量PCR | 第40-41页 |
2.2.7 叶肉细胞原生质体钙离子的观察 | 第41-42页 |
2.2.8 MYB2过表达基因克隆 | 第42-45页 |
2.2.9 农杆菌感受态的制备与转化 | 第45-46页 |
2.2.10 浸花法转化拟南芥和纯合体植株的筛选 | 第46页 |
2.2.11 GUS染色 | 第46页 |
2.2.12 花青素含量的测量 | 第46-47页 |
2.2.13 拟南芥钙离子浓度的测定 | 第47-48页 |
3 结果与分析 | 第48-72页 |
3.1 CBP60g启动子分析 | 第48-49页 |
3.2 CBP60g是拟南芥花青素合成的负调节因子 | 第49-59页 |
3.2.1 CBP60g影响干旱诱导的拟南芥花青素积累 | 第49-50页 |
3.2.2 CBP60g是蔗糖和激动素诱导花青素合成过程中的负调控因子 | 第50-52页 |
3.2.3 CBP60g的表达模式与花青素的积累模式相符合 | 第52-53页 |
3.2.4 花青素合成与调控基因的表达受CBP60g抑制 | 第53-54页 |
3.2.5 CBP60g调节花青素合成过程不依赖钙离子参与 | 第54-56页 |
3.2.6 讨论 | 第56-59页 |
3.3 CBP60g增强植物对钙离子的敏感性 | 第59-66页 |
3.3.1 过表达CBP60g增强拟南芥对氯化钙的敏感性 | 第59-60页 |
3.3.2 过表达CBP60g减少植物中钙离子的含量 | 第60-61页 |
3.3.3 过表达CBP60g抑制CAX1和CAX3基因的表达 | 第61-62页 |
3.3.4 CBP60g影响IAA对ABA诱导的气孔关闭的抑制 | 第62-63页 |
3.3.5 CBP60g调节拟南芥的生长发育 | 第63-65页 |
3.3.6 讨论 | 第65-66页 |
3.4 CBP60g增强ABA抑制拟南芥主根伸长与MYB2无关 | 第66-72页 |
3.4.1 CBP60g促进MBY2表达 | 第66-67页 |
3.4.2 MYB2的克隆与转化 | 第67-68页 |
3.4.3 MYB2不参与ABA抑制拟南芥主根伸长的现象 | 第68-70页 |
3.4.4 讨论 | 第70-72页 |
4 结论 | 第72-73页 |
致谢 | 第73-74页 |
参考文献 | 第74-99页 |
个人简介 | 第99页 |