| 摘要 | 第5-9页 |
| Abstract | 第9-12页 |
| 一.前言 | 第13-31页 |
| 1.1 植物细胞程序性死亡及其研究进展 | 第13-18页 |
| 1.1.1 细胞程序性死亡概述 | 第13-14页 |
| 1.1.2 植物细胞程序性死亡研究进展 | 第14-18页 |
| 1.1.3 PDCD5与OsPDCD5 | 第18页 |
| 1.2 植物与盐胁迫 | 第18-21页 |
| 1.2.1 盐胁迫对植物的危害 | 第18-19页 |
| 1.2.2 植物耐盐的机制 | 第19-20页 |
| 1.2.3 耐盐植物育种研究进展 | 第20-21页 |
| 1.3 富含亮氨酸重复序列型类受体蛋白激酶的研究进展 | 第21-24页 |
| 1.3.1 富含亮氨酸重复序列型类受体蛋白激酶概述 | 第21页 |
| 1.3.2 LRR-RLKs的结构 | 第21页 |
| 1.3.3 LRR-RLKs的生物学功能 | 第21-24页 |
| 1.3.4 LRK1概述 | 第24页 |
| 1.4 赤霉素的研究进展 | 第24-31页 |
| 1.4.1 赤霉素概述 | 第24-25页 |
| 1.4.2 赤霉素的生物合成 | 第25页 |
| 1.4.3 赤霉素的信号转导 | 第25-28页 |
| 1.4.4 赤霉素的生理作用 | 第28-29页 |
| 1.4.5 赤霉素的应用 | 第29-31页 |
| 二.材料与方法 | 第31-42页 |
| 2.1 水稻品种 | 第31页 |
| 2.2 试剂盒 | 第31页 |
| 2.3 水稻cDNA的获取 | 第31-33页 |
| 2.3.1 水稻总RNA的提取和纯化 | 第31-32页 |
| 2.3.2 反转录反应 | 第32-33页 |
| 2.4 实时定量PCR(RT-qPCR) | 第33-34页 |
| 2.5 盐胁迫处理 | 第34页 |
| 2.6 PEG处理 | 第34页 |
| 2.7 GA处理 | 第34页 |
| 2.8 PSK处理 | 第34-35页 |
| 2.9 F_v/F_m值的测定 | 第35页 |
| 2.10 基因芯片(Affymetrix GeneChipRice Genome Array) | 第35-41页 |
| 2.11 内源GA含量的测定 | 第41-42页 |
| 三.结果与讨论 | 第42-63页 |
| 3.1 反义OsPDCD5转基因提高水稻耐盐性 | 第42-55页 |
| 3.1.1 转Antisense-OsPDCD5提高水稻耐盐性 | 第42-43页 |
| 3.1.1.1 盐胁迫下对照和转基因植株的表型变化差异 | 第42页 |
| 3.1.1.2 盐胁迫下对照和转基因植株F_v/F_m值的变化差异 | 第42-43页 |
| 3.1.2 对照和转基因植株中OsPDCD5的表达差异 | 第43-45页 |
| 3.1.3 对照和转基因植株中其它PCD相关基因的表达差异 | 第45-47页 |
| 3.1.3.1 转基因植株中OsBI-1表达受抑制 | 第46页 |
| 3.1.3.2 转基因植株中Os11g0506800表达受抑制 | 第46-47页 |
| 3.1.4 对照和转基因植株叶片中基因表达谱分析 | 第47-52页 |
| 3.1.4.1 芯片分析 | 第47-50页 |
| 3.1.4.2 实时定量PCR分析验证 | 第50-52页 |
| 3.1.5 对照和转基因植株中OsCIPK23的表达差异 | 第52-53页 |
| 3.1.6 对照和转基因植株在PEG处理中的差异 | 第53-55页 |
| 3.1.6.1 表型差异 | 第53-54页 |
| 3.1.6.2 OsPDCD5和OsCIPK23的表达差异 | 第54-55页 |
| 3.2 LRK1基因影响水稻节间伸长 | 第55-63页 |
| 3.2.1 LRK1转基因抑制节间伸长 | 第55-56页 |
| 3.2.2 LRK1转基因抑制GA的生物合成 | 第56-58页 |
| 3.2.3 LRK1过表达降低水稻内源性GA的含量 | 第58-59页 |
| 3.2.4 PSK处理水稻愈伤组织抑制OsKO2的表达 | 第59-63页 |
| 四. 附录 | 第63-65页 |
| 附录1 | 第63-64页 |
| 附录2 | 第64-65页 |
| 参考文献 | 第65-77页 |
| 攻读学位期间研究成果 | 第77-78页 |
| 致谢 | 第78-79页 |
