| 摘要 | 第8-10页 |
| ABSTRACT | 第10-11页 |
| 缩略语表 | 第12-13页 |
| 第一章 前言 | 第13-26页 |
| 1 有机磷农药简介 | 第13-16页 |
| 1.1 有机磷农药的使用与污染 | 第13页 |
| 1.2 有机磷农药的毒性 | 第13-16页 |
| 1.2.1 对神经系统的毒性 | 第14页 |
| 1.2.2 对生殖系统的毒性 | 第14页 |
| 1.2.3 致癌致畸毒性 | 第14-15页 |
| 1.2.4 有机磷农药对鱼类的毒性影响 | 第15-16页 |
| 2 辛硫磷的研究进展 | 第16-17页 |
| 2.1 辛硫磷简介 | 第16页 |
| 2.2 辛硫磷在生物体内的代谢 | 第16页 |
| 2.3 辛硫磷的检测方法 | 第16-17页 |
| 2.4 辛硫磷的毒性 | 第17页 |
| 3 细胞色素P450酶系作用的研究进展 | 第17-21页 |
| 3.1 CYP450酶系概述 | 第17-20页 |
| 3.1.1 CYP450酶系多样性 | 第18-19页 |
| 3.1.2 CYP450酶系对农药的代谢 | 第19-20页 |
| 3.2 鱼类CYP450研究进展 | 第20-21页 |
| 3.2.1 鱼类CYP450简介 | 第20页 |
| 3.2.2 鱼类CYP450作为生物标志物在环境毒理学上的研究 | 第20-21页 |
| 4 组织损伤的形态学检测 | 第21-22页 |
| 4.1 HE染色技术 | 第21页 |
| 4.2 细胞超微结构观察 | 第21-22页 |
| 5 有机磷农药代谢产物的研究进展 | 第22-24页 |
| 6 本课题研究意义和研究内容 | 第24-26页 |
| 6.1 研究意义 | 第24页 |
| 6.2 研究内容 | 第24-25页 |
| 6.3 技术路线 | 第25-26页 |
| 第二章 辛硫磷对鲫鱼肝CYP450活性的影响研究 | 第26-44页 |
| 引言 | 第26页 |
| 1 材料与方法 | 第26-32页 |
| 1.1 主要试剂和仪器 | 第26-29页 |
| 1.1.1 药品与试剂 | 第26-27页 |
| 1.1.2 主要实验仪器 | 第27-28页 |
| 1.1.3 溶液配制 | 第28-29页 |
| 1.2 实验动物 | 第29页 |
| 1.3 实验方法 | 第29-32页 |
| 1.3.1 实验分组与给药 | 第29-30页 |
| 1.3.2 肝微粒体的制备 | 第30页 |
| 1.3.3 肝微粒体蛋白浓度的测定 | 第30页 |
| 1.3.4 肝微粒体总CYP450含量的测定 | 第30-31页 |
| 1.3.5 NADPH-细胞色素C还原酶(NCCR)活性测定 | 第31页 |
| 1.3.6 霉素-N-脱甲基酶(ERND)活性测定 | 第31页 |
| 1.3.7 氨基比林-N-脱甲基酶(APND)活性测定 | 第31-32页 |
| 1.3.8 苯胺-4-羟化酶(AH)活性测定 | 第32页 |
| 1.4 数据分析 | 第32页 |
| 2 结果与分析 | 第32-41页 |
| 2.1 甲醛标准曲线 | 第32-33页 |
| 2.2 4-氨基酚标准曲线 | 第33页 |
| 2.3 辛硫磷对CYP450酶诱导规律 | 第33-41页 |
| 2.3.1 辛硫磷对总CYP450含量的影响 | 第33-35页 |
| 2.3.2 辛硫磷对NCCR活性的影响 | 第35-36页 |
| 2.3.3 辛硫磷对ERND活性的影响 | 第36-38页 |
| 2.3.4 辛硫磷对APND活性的影响 | 第38-39页 |
| 2.3.5 辛硫磷对AH活性的影响 | 第39-40页 |
| 2.3.6 辛硫磷对鲫鱼CYP450酶活的恢复效应 | 第40-41页 |
| 3 小结与讨论 | 第41-44页 |
| 第三章 辛硫磷胁迫下鲫鱼主要组织病理损伤研究 | 第44-60页 |
| 引言 | 第44页 |
| 1 材料与方法 | 第44-46页 |
| 1.1 实验动物 | 第44页 |
| 1.2 实验用水 | 第44-45页 |
| 1.3 主要试剂和仪器 | 第45页 |
| 1.3.1 药品与试剂 | 第45页 |
| 1.3.2 溶液配制 | 第45页 |
| 1.3.3 主要实验仪器 | 第45页 |
| 1.4 实验方法 | 第45-46页 |
| 1.4.1 实验分组与给药 | 第45-46页 |
| 1.4.2 取样 | 第46页 |
| 1.4.3 HE染色石蜡切片 | 第46页 |
| 1.4.4 超微结构观察 | 第46页 |
| 2 结果与分析 | 第46-57页 |
| 2.1 HE染色观察结果 | 第46-51页 |
| 2.1.1 肝显微结构观察结果 | 第46-48页 |
| 2.1.2 鳃显微结构观察结果 | 第48-49页 |
| 2.1.3 脑显微结构观察结果 | 第49-51页 |
| 2.2 超微结构观察 | 第51-57页 |
| 2.2.1 肝超微结构观察结果 | 第51-53页 |
| 2.2.2 鳃超微结构观察结果 | 第53-55页 |
| 2.2.3 脑超微结构观察结果 | 第55-57页 |
| 3 小结与讨论 | 第57-60页 |
| 第四章 辛硫磷在鲫鱼体内的代谢研究 | 第60-73页 |
| 引言 | 第60页 |
| 1 材料与方法 | 第60-63页 |
| 1.1 药品与试剂 | 第60-61页 |
| 1.2 仪器与设备 | 第61页 |
| 1.3 实验动物 | 第61页 |
| 1.4 给药 | 第61页 |
| 1.5 样品采集 | 第61-62页 |
| 1.6 样品处理 | 第62页 |
| 1.6.1 提取和净化条件的选择 | 第62页 |
| 1.6.2 处理方法 | 第62页 |
| 1.7 仪器参数 | 第62-63页 |
| 1.8 代谢产物的鉴定 | 第63页 |
| 2 结果与分析 | 第63-71页 |
| 2.1 辛硫磷的裂解途径分析 | 第63-65页 |
| 2.2 水中代谢产物的鉴定 | 第65-69页 |
| 2.3 血液中代谢产物的鉴定 | 第69页 |
| 2.4 肝脏中代谢产物的鉴定 | 第69-71页 |
| 2.5 肌肉中代谢产物的鉴定 | 第71页 |
| 3 小结与讨论 | 第71-73页 |
| 参考文献 | 第73-83页 |
| 致谢 | 第83页 |
