摘要 | 第4-6页 |
Abstract | 第6-7页 |
引言 | 第12-14页 |
第1章 绪论 | 第14-28页 |
1.1 土壤氮循环 | 第14-15页 |
1.2 土壤硝化作用 | 第15页 |
1.3 土壤微生物及氨氧化微生物 | 第15-18页 |
1.3.1 土壤微生物 | 第15-16页 |
1.3.2 氨氧化微生物 | 第16-18页 |
1.4 影响氨氧化细菌和古菌生态位分异的因子 | 第18-21页 |
1.4.1 pH值 | 第18-19页 |
1.4.2 铵浓度 | 第19页 |
1.4.3 温度 | 第19-20页 |
1.4.4 有机质 | 第20页 |
1.4.5 氧气浓度 | 第20-21页 |
1.5 土地利用方式对土壤性质的影响 | 第21页 |
1.6 土壤硝化作用及其功能微生物的相关研究方法 | 第21-25页 |
1.6.1 同位素稀释法 | 第21-22页 |
1.6.2 乙炔抑制方法 | 第22页 |
1.6.3 选择性抑制技术 | 第22-23页 |
1.6.4 稳定性同位素核酸探针技术 | 第23-24页 |
1.6.5 实时定量PCR(Q-PCR) | 第24-25页 |
1.6.6 克隆文库 | 第25页 |
1.7 研究目标、研究内容以及意义 | 第25-28页 |
1.7.1 研究目标 | 第25-26页 |
1.7.2 研究内容 | 第26页 |
1.7.3 研究意义 | 第26页 |
1.7.4 研究路线 | 第26-28页 |
第2章 不同利用方式红壤自养和异养硝化作用的相对贡献及其硝化微生物种类 | 第28-36页 |
2.1 引言 | 第28-29页 |
2.2 材料与方法 | 第29-31页 |
2.2.1 采样点的描述和土壤采样 | 第29页 |
2.2.2 土壤性质分析 | 第29-30页 |
2.2.3 选择性抑制剂结合~(15)N稀释技术培养试验 | 第30-31页 |
2.2.4 数据分析 | 第31页 |
2.3 结果与分析 | 第31-34页 |
2.3.1 土壤性质 | 第31-32页 |
2.3.2 硝态氮原子百分超的变化 | 第32-33页 |
2.3.3 土壤总硝化速率 | 第33-34页 |
2.4 讨论 | 第34-35页 |
2.5 小结 | 第35-36页 |
第3章 利用方式对红壤氨氧化微生物生态位分异的影响 | 第36-50页 |
3.1 引言 | 第36-37页 |
3.2 材料与方法 | 第37-42页 |
3.2.1 采样点的描述和土壤采样 | 第37页 |
3.2.2 微域培养实验 | 第37-38页 |
3.2.3 DNA提取和SIP分层 | 第38-40页 |
(一) DNA的提取 | 第38-39页 |
(二) SIP分层 | 第39-40页 |
3.2.4 实时荧光定量PCR | 第40-41页 |
3.2.5 构建克隆文库 | 第41-42页 |
3.3 结果与分析 | 第42-48页 |
3.3.1 不同利用方式土壤SIP培养后pH值的变化 | 第42-43页 |
3.3.2 不同利用方式土壤SIP培养后无机氮含量的变化 | 第43-45页 |
3.3.3 不同利用方式土壤SIP培养后氨氧化微生物丰度的变化 | 第45-46页 |
3.3.4 不同浮力密度分层液中AOA和AOB的数量分布 | 第46-47页 |
3.3.5 不同利用方式土壤中“活跃的”氨氧化微生物群落组成 | 第47-48页 |
3.4 讨论 | 第48-49页 |
3.5 小结 | 第49-50页 |
第4章 水分对亚热带酸性森林土壤氨氧化微生物的影响 | 第50-60页 |
4.1 引言 | 第50-51页 |
4.2 材料与方法 | 第51-53页 |
4.2.1 采样点的描述和土壤采样 | 第51-52页 |
4.2.2 培养实验方法 | 第52页 |
4.2.3 基本理化性质分析 | 第52页 |
4.2.4 实时荧光定量PCR | 第52-53页 |
4.2.5 数据分析 | 第53页 |
4.3 结果与分析 | 第53-57页 |
4.3.1 pH值的变化 | 第53-54页 |
4.3.2 无机氮含量的变化 | 第54页 |
4.3.3 水分培养实验后氨氧化微生物数量的变化 | 第54-56页 |
4.3.4 水分培养实验后理论NH_3浓度的变化 | 第56-57页 |
4.4 讨论 | 第57-59页 |
4.5 小结 | 第59-60页 |
第5章 结论与展望 | 第60-62页 |
5.1 主要结论 | 第60页 |
5.2 创新点 | 第60-61页 |
5.3 不足与展望 | 第61-62页 |
参考文献 | 第62-76页 |
附录 | 第76-77页 |
致谢 | 第77页 |