| 摘要 | 第8-11页 |
| ABSTRACT | 第11-13页 |
| 缩略词(Abbreviation) | 第14-16页 |
| 引言 | 第16-20页 |
| 参考文献 | 第18-20页 |
| 第一部分 文献综述 | 第20-48页 |
| 第一章 生殖细胞发生机理的研究进展 | 第20-34页 |
| 1 原始生殖细胞的形成、迁移与性别分化 | 第20-22页 |
| 1.1 原始生殖细胞的形成 | 第20页 |
| 1.2 原始生殖细胞的迁移 | 第20-21页 |
| 1.3 原始生殖细胞的性别分化 | 第21-22页 |
| 2 生殖细胞的减数分裂 | 第22-24页 |
| 2.1 生殖细胞减数分裂的启动 | 第22-23页 |
| 2.2 生殖细胞减数分裂的调控因素 | 第23-24页 |
| 3 生殖细胞的表观遗传学修饰 | 第24-27页 |
| 3.1 生殖细胞的DNA甲基化 | 第24-26页 |
| 3.2 生殖细胞的组蛋白修饰 | 第26-27页 |
| 4 展望 | 第27-28页 |
| 参考文献 | 第28-34页 |
| 第二章 生殖细胞体外诱导的研究进展 | 第34-48页 |
| 1 干细胞向生殖细胞体外诱导分化 | 第34-39页 |
| 1.1 胚胎干细胞体外向生殖细胞分化 | 第34-35页 |
| 1.2 诱导多能干细胞体外向生殖细胞分化 | 第35-36页 |
| 1.3 成体干细胞体外向生殖细胞转分化 | 第36-39页 |
| 2 生殖细胞体外分化的诱导系统 | 第39-42页 |
| 2.1 特异基因过表达诱导体系 | 第39-41页 |
| 2.2 微环境培养诱导体系 | 第41-42页 |
| 2.3 生长因子诱导体系 | 第42页 |
| 3 展望 | 第42-44页 |
| 参考文献 | 第44-48页 |
| 第二部分 试验研究 | 第48-116页 |
| 第三章 山羊STRA8基因的表达及其真核表达载体的构建 | 第48-62页 |
| 1 材料与方法 | 第48-54页 |
| 1.1 试验动物 | 第48页 |
| 1.2 主要仪器 | 第48-49页 |
| 1.3 主要试剂 | 第49页 |
| 1.4 主要溶液配制 | 第49-50页 |
| 1.5 试验方法 | 第50-54页 |
| 2 结果 | 第54-57页 |
| 2.1 STRA8蛋白在不同发育阶段山羊睾丸组织中的定位 | 第54页 |
| 2.2 STRA8基因在不同发育阶段山羊睾丸组织中的定量表达 | 第54-56页 |
| 2.3 山羊STRA8基因CDS区序列扩增 | 第56页 |
| 2.4 pEX-4-STRA8载体的构建与鉴定 | 第56-57页 |
| 3 讨论 | 第57-59页 |
| 参考文献 | 第59-62页 |
| 第四章 山羊BOULE和DAZL基因的表达及其真核表达载体的构建 | 第62-78页 |
| 1 材料与方法 | 第62-66页 |
| 1.1 试验动物 | 第62页 |
| 1.2 主要仪器 | 第62页 |
| 1.3 主要试剂 | 第62-63页 |
| 1.4 主要溶液配制 | 第63页 |
| 1.5 试验方法 | 第63-66页 |
| 2 结果 | 第66-72页 |
| 2.1 BOULE和DAZL在不同发育阶段山羊睾丸组织中的定位 | 第66-67页 |
| 2.2 BOULE和DAZL基因在不同发育阶段山羊睾丸组织中的定量表达 | 第67-69页 |
| 2.3 山羊BOULE基因CDS区序列扩增 | 第69-70页 |
| 2.4 pEX-4-BOULE载体的构建与鉴定 | 第70页 |
| 2.5 山羊DAZL基因CDS区序列扩增 | 第70-71页 |
| 2.6 pEGFP-DAZL载体的构建与鉴定 | 第71-72页 |
| 3 讨论 | 第72-74页 |
| 参考文献 | 第74-78页 |
| 第五章 多基因质粒DNA诱导山羊BMSCs向雄性生殖细胞体外转分化的研究 | 第78-96页 |
| 1 材料与方法 | 第78-86页 |
| 1.1 试验动物 | 第78页 |
| 1.2 主要仪器 | 第78-79页 |
| 1.3 主要试剂 | 第79-80页 |
| 1.4 主要溶液配制 | 第80页 |
| 1.5 试验方法 | 第80-86页 |
| 2 结果 | 第86-90页 |
| 2.1 多基因质粒DNA诱导前后细胞形态变化 | 第86页 |
| 2.2 多基因质粒DNA诱导对生殖细胞特异基因表达的影响 | 第86-88页 |
| 2.3 多基因质粒DNA诱导对生殖细胞特异蛋白表达的影响 | 第88-90页 |
| 3 讨论 | 第90-93页 |
| 参考文献 | 第93-96页 |
| 第六章 多基因mRNA诱导山羊BMSCs向雄性生殖细胞体外转分化的研究 | 第96-116页 |
| 1 材料与方法 | 第96-104页 |
| 1.1 试验动物 | 第96页 |
| 1.2 主要仪器 | 第96页 |
| 1.3 主要试剂 | 第96-97页 |
| 1.4 主要溶液配制 | 第97页 |
| 1.5 试验方法 | 第97-104页 |
| 2 结果 | 第104-111页 |
| 2.1 STRA8、BOULE和DAZL基因体外转录mRNA的制备 | 第104-105页 |
| 2.2 不同组合mRNA诱导前后细胞形态变化 | 第105-106页 |
| 2.3 不同组合mRNA诱导对生殖细胞特异基因表达的影响 | 第106-107页 |
| 2.4 不同组合mRNA诱导对生殖细胞特异蛋白表达的影响 | 第107-110页 |
| 2.5 不同组合mRNA诱导对印记基因H19甲基化状态的影响 | 第110-111页 |
| 3 讨论 | 第111-113页 |
| 参考文献 | 第113-116页 |
| 全文结论 | 第116-118页 |
| 创新点 | 第118-120页 |
| 附录一 山羊STRA8基因CDS序列 | 第120-122页 |
| 附录二 山羊BOULE基因CDS序列 | 第122-124页 |
| 附录三 山羊DAZL基因CDS序列 | 第124-126页 |
| 攻读硕士期间发表的学术论文 | 第126-128页 |
| 致谢 | 第128-129页 |
