| 中文摘要 | 第12-14页 |
| 英文摘要 | 第14-15页 |
| 第一章 文献综述 | 第16-33页 |
| 1.1 植物适应低温胁迫作用机制的研究进展 | 第16-20页 |
| 1.1.1 叶绿素的变化 | 第16-17页 |
| 1.1.2 丙二醛的变化 | 第17页 |
| 1.1.3 渗透调节物质的变化 | 第17-18页 |
| 1.1.4 拟南芥CBFs信号通路的相关研究 | 第18-20页 |
| 1.2 植物微管简介 | 第20-21页 |
| 1.2.1 微管基本构成 | 第20页 |
| 1.2.2 植物微管的动态 | 第20-21页 |
| 1.3 微管结合蛋白的研究进展 | 第21-24页 |
| 1.3.1 微管相关蛋白的分类 | 第21页 |
| 1.3.2 与微管聚合相关的蛋白 | 第21页 |
| 1.3.3 与微管解聚相关的蛋白 | 第21-24页 |
| 1.4 植物微管动态变化在植物逆境生长发育中的作用及机制 | 第24-32页 |
| 1.4.1 盐胁迫下的微管动态 | 第24-25页 |
| 1.4.2 干旱胁迫下的微管动态 | 第25-27页 |
| 1.4.3 非生物胁迫下微管动态变化在ABA信号途径中的作用 | 第27-29页 |
| 1.4.4 微管骨架在植物响应低温胁迫中的作用 | 第29-32页 |
| 1.5 本研究的目的和思路 | 第32-33页 |
| 第二章 低温下微管解聚药剂对拟南芥生长的影响 | 第33-46页 |
| 2.1 材料和方法 | 第33-36页 |
| 2.1.1 实验仪器 | 第33页 |
| 2.1.2 实验材料与试剂 | 第33页 |
| 2.1.3 实验方法 | 第33-34页 |
| 2.1.4 测定指标方法 | 第34-36页 |
| 2.2 结果与分析 | 第36-44页 |
| 2.2.1 低温微管解聚药剂处理拟南芥野生型植株20d生长情况 | 第36-37页 |
| 2.2.2 低温微管解聚药剂处理拟南芥野生型植株30d生长情况 | 第37-39页 |
| 2.2.3 低温微管解聚药剂对拟南芥野生型植株叶绿素含量的影响 | 第39-40页 |
| 2.2.4 低温微管解聚药剂对拟南芥野生型植株脯氨酸含量的影响 | 第40-41页 |
| 2.2.5 低温微管解聚药剂对拟南芥野生型植株丙二醛含量的影响 | 第41-42页 |
| 2.2.6 低温微管解聚药剂对拟南芥野生型植株可溶性蛋白含量的影响 | 第42-43页 |
| 2.2.7 低温微管解聚药剂对拟南芥野生型植株可溶性糖含量的影响 | 第43-44页 |
| 2.3 讨论 | 第44-45页 |
| 2.4 结论 | 第45-46页 |
| 第三章 低温下微管解聚药剂对拟南芥微管动态变化的影响 | 第46-50页 |
| 3.1 材料和方法 | 第46页 |
| 3.1.1 实验仪器 | 第46页 |
| 3.1.2 实验材料与试剂 | 第46页 |
| 3.1.3 实验方法 | 第46页 |
| 3.2 结果和分析 | 第46-49页 |
| 3.2.1 低温胁迫下野生型拟南芥子叶中微管的动态变化 | 第46-48页 |
| 3.2.2 低温胁迫下微管解聚药剂PPM处理野生型拟南芥子叶中微管的动态变化 | 第48-49页 |
| 3.3 讨论 | 第49页 |
| 3.4 结论 | 第49-50页 |
| 第四章 CBFs突变体的鉴定 | 第50-58页 |
| 4.1 材料与方法 | 第50-55页 |
| 4.1.1 材料与仪器 | 第50页 |
| 4.1.2 方法 | 第50-55页 |
| 4.2 实验结果 | 第55-56页 |
| 4.2.1 T-DNA插入位点 | 第55页 |
| 4.2.2 cbf1-1、cbf2-2、cbf3-2突变体三引物法鉴定结果 | 第55页 |
| 4.2.3 RT-PCR鉴定结果 | 第55-56页 |
| 4.3 讨论 | 第56-57页 |
| 4.4 结论 | 第57-58页 |
| 第五章 低温下微管解聚药剂对cbf突变体植株生长的影响 | 第58-62页 |
| 5.1 材料和方法 | 第58-59页 |
| 5.1.1 实验仪器 | 第58页 |
| 5.1.2 实验材料与试剂 | 第58页 |
| 5.1.3 实验方法 | 第58-59页 |
| 5.2 结果与分析 | 第59-61页 |
| 5.2.1 低温下微管解聚药剂处理拟南芥CBFs缺失突变体植株25d生长情况 | 第59-61页 |
| 5.3 讨论 | 第61页 |
| 5.4 结论 | 第61-62页 |
| 第六章 鉴定响应低温调节的微管结合蛋白 | 第62-69页 |
| 6.1 材料和方法 | 第62-65页 |
| 6.1.1 实验仪器 | 第62页 |
| 6.1.2 实验材料与试剂 | 第62页 |
| 6.1.3 实验方法 | 第62-65页 |
| 6.2 结果与分析 | 第65-67页 |
| 6.2.1 总RNA的提取和样品cDNA的获得 | 第65-66页 |
| 6.2.2 引物特异性分析 | 第66页 |
| 6.2.3 RT-PCR鉴定结果 | 第66-67页 |
| 6.2.4 qRT-PCR鉴定结果 | 第67页 |
| 6.3 讨论 | 第67-68页 |
| 6.4 结论 | 第68-69页 |
| 第七章 CBF突变体下MAP18的表达量变化 | 第69-74页 |
| 7.1 材料与方法 | 第69-71页 |
| 7.1.1 实验仪器和试剂 | 第69页 |
| 7.1.2 实验材料 | 第69页 |
| 7.1.3 实验方法 | 第69-71页 |
| 7.2 结果与分析 | 第71-73页 |
| 7.2.1 RNA反转录成cDNA | 第71-72页 |
| 7.2.2 引物特异性分析 | 第72页 |
| 7.2.3 CBFs突变体对AtMAP18表达量的影响 | 第72-73页 |
| 7.3 讨论 | 第73页 |
| 7.4 结论 | 第73-74页 |
| 第八章 低温下微管解聚药剂对响应低温的微管结合蛋白植株生长的影响 | 第74-78页 |
| 8.1 材料和方法 | 第74-75页 |
| 8.1.1 实验仪器 | 第74页 |
| 8.1.2 实验材料与试剂 | 第74页 |
| 8.1.3 实验方法 | 第74-75页 |
| 8.2 结果与分析 | 第75-77页 |
| 8.2.1 低温下微管解聚药剂处理对拟南芥AtMAP18过表达(OE)及RNAi转基因植株生长的影响 | 第75-77页 |
| 8.3 讨论 | 第77页 |
| 8.4 结论 | 第77-78页 |
| 参考文献 | 第78-90页 |
| 致谢 | 第90页 |
