摘要 | 第5-7页 |
Abstract | 第7-8页 |
第1章 绪论 | 第11-22页 |
1.1 根 | 第11-14页 |
1.1.1 拟南芥根的基本结构 | 第11-12页 |
1.1.2 拟南芥根的发育 | 第12页 |
1.1.3 激素对根的发育的影响 | 第12-14页 |
1.2 叶 | 第14-16页 |
1.3 DEAD-box家族RNA解旋酶 | 第16-20页 |
1.3.1 RNA解旋酶定义及分类 | 第16页 |
1.3.2 DEAD-box RNA解旋酶的结构和生化功能 | 第16-17页 |
1.3.3 DEAD-box RNA解旋酶对拟南芥生长发育的影响 | 第17-20页 |
1.4 mRNA前体的成熟和核糖体的生物合成 | 第20页 |
1.5 本研究的目的及意义 | 第20-22页 |
第2章 材料和方法 | 第22-37页 |
2.1 实验材料 | 第22-23页 |
2.1.1 植物材料 | 第22页 |
2.1.2 试验用菌株 | 第22页 |
2.1.3 工具酶类及试剂盒等 | 第22页 |
2.1.4 qRT-PCR引物 | 第22-23页 |
2.2 主要试剂及配制 | 第23-25页 |
2.2.1 常用溶液与培养基的配制 | 第23-24页 |
2.2.2 拟南芥种子消毒液 | 第24页 |
2.2.3 1000X抗生素 | 第24页 |
2.2.4 2X浓度CTAB溶液: | 第24-25页 |
2.2.5 透明液 | 第25页 |
2.2.6 GUS染色 | 第25页 |
2.3 实验方法 | 第25-37页 |
2.3.1 拟南芥的栽种及培养 | 第25-26页 |
2.3.2 确定T-DNA插入位点 | 第26-27页 |
2.3.3 载体的构建 | 第27-32页 |
2.3.4 拟南芥的转基因及转基因株系的筛选、鉴定 | 第32-34页 |
2.3.5 染色方法 | 第34页 |
2.3.6 根尖透明 | 第34页 |
2.3.7 提取拟南芥基因组(CTAB法) | 第34-35页 |
2.3.8 拟南芥RNA提取方法 | 第35-37页 |
第3章 实验结果与分析 | 第37-55页 |
3.1 拟南芥T-DNA突变体库的构建及突变体m60的筛选 | 第37页 |
3.2 M60突变体的T-DNA插入位点的确定 | 第37-38页 |
3.3 m60突变体的表型分析 | 第38-43页 |
3.3.1 突变体m60的植株明显矮化 | 第38页 |
3.3.2 突变体m60根生长迟缓 | 第38-41页 |
3.3.3 30天后突变体根的长度依旧不及野生型 | 第41-42页 |
3.3.4 突变体m60植株叶缺陷严重 | 第42-43页 |
3.4 M60表型回复 | 第43-45页 |
3.5 M60的表达模式分析 | 第45-47页 |
3.6 M60基因的基本功能预测 | 第47-55页 |
3.6.1 基因进化及保守性分析 | 第47-52页 |
3.6.2 验证M60突变对45s/35s pre-rRNA剪切成熟的影响 | 第52-53页 |
3.6.3 M60突变对激素水平的影响 | 第53-55页 |
第4章 讨论 | 第55-58页 |
参考文献 | 第58-62页 |
致谢 | 第62页 |